| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 第一章 综述 | 第10-15页 |
| ·植物细胞质雄性不育 | 第10-13页 |
| ·线粒体与植物细胞质雄性不育 | 第10-11页 |
| ·水稻CMS 相关基因研究进展 | 第11-12页 |
| ·植物CMS 的机理 | 第12-13页 |
| ·线粒体NADH 脱氢酶复合物与植物细胞质雄性不育 | 第13-14页 |
| ·本研究的主要内容、目的及意义 | 第14-15页 |
| 第二章 水稻线粒体基因mxⅡ超表达对育性的影响 | 第15-32页 |
| ·引言 | 第15页 |
| ·材料、试剂与仪器 | 第15-17页 |
| ·实验材料 | 第15-16页 |
| ·主要实验试剂 | 第16-17页 |
| ·化学试剂 | 第16页 |
| ·水稻遗传转化培养基 | 第16-17页 |
| ·实验仪器 | 第17页 |
| ·实验用引物 | 第17页 |
| ·实验方法 | 第17-25页 |
| ·提取RNA 用品的除RNA 酶处理 | 第17-18页 |
| ·YTB 叶片RNA 的提取 | 第18页 |
| ·RNA 质量检测 | 第18-19页 |
| ·1 %琼脂糖凝胶的配制 | 第18页 |
| ·电泳 | 第18-19页 |
| ·点样 | 第19页 |
| ·反转录合成cDNA | 第19页 |
| ·目的基因mxⅡ的PCR 扩增 | 第19-20页 |
| ·PCR 产物的回收与纯化 | 第20页 |
| ·感受态细胞的制备 | 第20-21页 |
| ·大肠杆菌DH5α感受态细胞的制备 | 第20-21页 |
| ·根癌农杆菌 EHA105 感受态细胞的制备 | 第21页 |
| ·目的片段mxⅡ与质粒DNA 的连接与电激转化 | 第21-22页 |
| ·目的片段与载体质粒DNA 片段的连接 | 第21-22页 |
| ·电击转化 | 第22页 |
| ·碱裂解法提取质粒DNA | 第22-23页 |
| ·农杆菌介导水稻的遗传转化 | 第23-24页 |
| ·水稻愈伤组织的诱导和继代 | 第23页 |
| ·农杆菌的活化和悬浮液制备 | 第23页 |
| ·愈伤组织的浸染及共培养 | 第23页 |
| ·抗性愈伤组织的筛选和分化 | 第23-24页 |
| ·幼苗的生根和移栽 | 第24页 |
| ·转基因植株的分子检测 | 第24-25页 |
| ·转基因植株基因组DNA 的小量提取 | 第24页 |
| ·转基因植株DNA 的PCR 分析 | 第24-25页 |
| ·水稻花粉育性鉴定 | 第25页 |
| ·结果与分析 | 第25-31页 |
| ·目的片段mxⅡ的获得 | 第25-26页 |
| ·35S 启动子驱动的mxⅡ表达载体的构建 | 第26页 |
| ·mxⅡ表达载体的遗传转化与转基因植株的获得 | 第26-27页 |
| ·转基因植株分子检测 | 第27-28页 |
| ·花粉育性检测及结实率统计 | 第28-31页 |
| ·I_2-KI 染色检测花粉育性 | 第28-30页 |
| ·结实率统计 | 第30-31页 |
| ·讨论 | 第31-32页 |
| 第三章 线粒体mxⅠ基因超表达对BT 型CMS 育性影响 | 第32-37页 |
| ·引言 | 第32页 |
| ·实验材料、试剂与器材 | 第32-33页 |
| ·实验材料 | 第32页 |
| ·实验试剂 | 第32-33页 |
| ·化学试剂 | 第32页 |
| ·培养基 | 第32-33页 |
| ·检测转基因阳性植株PCR 引物 | 第33页 |
| ·实验方法 | 第33页 |
| ·农杆菌介导水稻的遗传转化 | 第33页 |
| ·转基因植株的分子检测 | 第33页 |
| ·转基因水稻植株的表型鉴定 | 第33页 |
| ·结果与分析 | 第33-36页 |
| ·mxⅠ超表达载体的遗传转化与转基因植株的获得 | 第33-34页 |
| ·mxⅠ超表达载体转基因植株阳性检测 | 第34-35页 |
| ·I_2-KI 染色检测花粉育性检测及结实率统计 | 第35-36页 |
| ·I_2-KI 染色检测花粉育性检测 | 第35页 |
| ·结实率统计 | 第35-36页 |
| ·讨论 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-43页 |
| 致谢 | 第43-44页 |
| 附录一 相关试剂配制方法 | 第44-45页 |
| 附录二：相关培养基配制方法 | 第45-46页 |
| 附录三：相关激素和抗生素的配制 | 第46-47页 |
| 附录四：英文缩略语及英文对照 | 第47-49页 |
| 在读期间发表的论文 | 第49页 |
| 参与的科研课题 | 第49页 |