| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 第1章 绪论 | 第10-21页 |
| ·课题背景 | 第10-11页 |
| ·真菌多糖的研究进展 | 第11-17页 |
| ·多糖提取技术 | 第11-12页 |
| ·分离纯化 | 第12-14页 |
| ·真菌多糖的结构、构效关系及结构修饰 | 第14-15页 |
| ·真菌多糖的活性 | 第15-16页 |
| ·真菌多糖研究趋势与展望 | 第16-17页 |
| ·松茸及松茸多糖的研究概况 | 第17-19页 |
| ·松茸的生长及培养 | 第17-18页 |
| ·组织分离 | 第18页 |
| ·松茸活性物质的研究 | 第18-19页 |
| ·酶、基因工程等生物技术研究 | 第19页 |
| ·本课题的研究意义及研究内容 | 第19-21页 |
| ·研究意义 | 第19-20页 |
| ·主要的研究内容 | 第20-21页 |
| 第2章 材料与方法 | 第21-34页 |
| ·材料与试剂 | 第21-23页 |
| ·试剂 | 第21-22页 |
| ·仪器 | 第22-23页 |
| ·实验方法 | 第23-34页 |
| ·提取方法要点 | 第23-24页 |
| ·多糖的得率 | 第24页 |
| ·总糖含量的测定 | 第24-25页 |
| ·单糖含量的测定－DNS法 | 第25-26页 |
| ·单因素实验 | 第26页 |
| ·正交实验 | 第26页 |
| ·蛋白质含量的测定 | 第26-27页 |
| ·脱蛋白 | 第27页 |
| ·除色素 | 第27-28页 |
| ·透析 | 第28-29页 |
| ·离子交换纤维素DEAE－52 柱层析 | 第29页 |
| ·Sephadex G-100 分离 | 第29-30页 |
| ·多糖的纯度鉴定及分子量的测定 | 第30页 |
| ·薄层色谱（TLC）鉴定 | 第30-31页 |
| ·多糖的红外光谱分析 | 第31页 |
| ·多糖的紫外光谱分析 | 第31页 |
| ·蜗牛酶活性的测定方法 | 第31页 |
| ·蜗牛酶降解方法 | 第31页 |
| ·快融法复苏细胞 | 第31-32页 |
| ·细胞传代 | 第32页 |
| ·给药实验 | 第32页 |
| ·抑制率的测定 | 第32-33页 |
| ·统计学处理 | 第33-34页 |
| 第3章 松茸多糖的分离纯化 | 第34-47页 |
| ·引言 | 第34-35页 |
| ·多糖提取的研究 | 第35-41页 |
| ·提取的流程 | 第35页 |
| ·浸提工艺的研究 | 第35-38页 |
| ·醇沉工艺的研究 | 第38-39页 |
| ·多糖含量测定 | 第39-41页 |
| ·多糖纯化的研究 | 第41-45页 |
| ·纯化的流程 | 第41页 |
| ·测蛋白含量的标准曲线 | 第41页 |
| ·多糖脱色方法的确定 | 第41-42页 |
| ·纤维素DE－52 层析结果 | 第42-43页 |
| ·Sephadex G-100 分离组分TMWEP-2 的结果 | 第43页 |
| ·凝胶分离所得组分TMWEP-2Ⅰ的纯度鉴定 | 第43-45页 |
| ·本章小结 | 第45-47页 |
| 第4章 多糖的结构初探及酶法修饰 | 第47-55页 |
| ·引言 | 第47页 |
| ·薄层层析结果 | 第47-48页 |
| ·红外光谱分析结果 | 第48-49页 |
| ·紫外光谱分析结果 | 第49-50页 |
| ·蜗牛酶水解松茸多糖的单因素实验结果 | 第50-54页 |
| ·酶解时间的影响 | 第50-51页 |
| ·酶与底物浓度比的影响 | 第51页 |
| ·酶解初始pH值的影响 | 第51-52页 |
| ·酶解温度的影响 | 第52-53页 |
| ·蜗牛酶降解正交实验结果 | 第53-54页 |
| ·本章小结 | 第54-55页 |
| 第5章 松茸多糖抗肿瘤活性的研究 | 第55-59页 |
| ·引言 | 第55-56页 |
| ·松茸粗多糖对三种细胞的抑制结果 | 第56-58页 |
| ·松茸纯多糖TMWEP-2Ⅰ对三种细胞的抑制结果 | 第56-57页 |
| ·降解TMWEP-2Ⅰ对三种细胞的抑制结果 | 第57-58页 |
| ·本章小节 | 第58-59页 |
| 结论 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-66页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第66-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |