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RNA外部引导序列抑制人巨细胞病毒UL49基因表达的研究

摘要第1-8页
Abstract第8-10页
一 前言第10-18页
 1.核酶的发现及分类第10页
 2.RNASE P简介及其作为分子剪刀的历史第10-12页
 3.关于EGS第12-13页
 4.HCMV简介第13-16页
 5.MOUSB U6启动子第16页
 6.UL49—A片段第16-17页
 7.课题意义第17-18页
二 材料和方法第18-35页
 1 主要仪器设备第18页
 2 材料第18-22页
   ·细胞株第18-19页
   ·质粒和菌株第19页
   ·引物和测序第19页
   ·主要试剂和试剂盒第19-20页
   ·培养基的配制第20页
     ·细菌培养基的配置第20页
     ·细胞培养基的配置第20页
     ·血清的处理第20页
   ·其他常用试剂的配置第20-22页
     ·质粒DNA提取及纯化所需试剂第21页
     ·细胞培养常用试剂的配制第21页
     ·琼脂糖凝胶电泳所需溶液第21页
     ·所需抗生素的配置第21-22页
 3 实验路线及方法第22-35页
   ·EGS的设计第22-24页
     ·UL49-A片段+GFP片段二级结构的模拟第22页
     ·EGS的设计原则第22-23页
     ·靶位点的搜寻第23-24页
   ·EGS的克隆第24-28页
     ·EGS克隆技术路线第24页
     ·EGS克隆引物的设计第24-25页
     ·PCR扩增mU6+EGS片段第25-26页
     ·凝胶回收纯化第26页
     ·载体pcDNA3.1-的制备第26页
     ·插入片段(mU6+EGS)和载体(pcDNA3.1-)的双酶切、连接第26-27页
     ·制备感受态第27页
     ·转化第27页
     ·快速抽提法抽提质粒验证第27-28页
   ·底物片段UL49-A的克隆第28-30页
     ·底物片段UL49-A克隆技术路线第28页
     ·底物片段UL49-A两端引物的设计第28页
     ·PCR扩增第28-29页
     ·凝胶回收纯化第29页
     ·载体pEGFP-Nl的制备第29页
     ·插入片段(UL49-A片段)和载体(pEGFP-Nl)的双酶切、连接第29页
     ·制备感受态第29-30页
     ·转化第30页
     ·快速抽提法抽提质粒验证第30页
   ·细胞复苏和细胞冻存第30页
   ·细胞转染第30页
   ·TYPHOON扫描第30页
   ·流式细胞仪实验第30-31页
   ·RNA的抽提第31页
   ·RNA的纯化第31-32页
   ·RT-PCR第32-33页
     ·RT-PCR检测UL49-A片段在胞内的表达第32-33页
     ·RT-PCR检测EGS在胞内的表达第33页
   ·REAL-TTME PCR第33-35页
三 结果与分析第35-48页
 1 EGS的设计第35-37页
   ·UL49-A片段、UL49-A+GFP片段二级结构模拟结果及靶位点的确定第35-37页
   ·EGS片段的设计第37页
 2 EGS表达质粒的构建第37-38页
 3 UL49-A表达质粒的构建第38-40页
 4 EGS对HCMVUL49基因表达的抑制作用第40-48页
   ·TYPHOON扫描第40-42页
   ·流式细胞仪检测第42-44页
   ·RT-PCR结果第44-45页
     ·RT-PCR检测UL49-A片段在胞内的表达第44-45页
     ·RT-PCR检测EGS在胞内的表达第45页
   ·REAL TIME PCR结果第45-48页
四 讨论第48-53页
 1 EGS的设计第48-49页
 2 EGS的可能用途第49-51页
 3 EGS的不足第51-52页
 4 CMV和U6双启动子第52-53页
五 结论第53-54页
六 附录第54-57页
 附录1 U6-PLXSN测序结果第54页
 附录2 PEGFP-Nl载体测序结果第54页
 附录3 UL49-A-GFP测序结果第54-55页
 附录4 PDU6-EGS1测序结果第55页
 附录5 PDU6-EGS2测序结果第55页
 附录6 PDU6-EGS3测序结果第55页
 附录7 PDU6-EGS4测序结果第55-56页
 附录8 PDU6-EGS5测序结果第56页
 附录9 PDU6-EGS6测序结果第56-57页
七 参考文献第57-60页
八 致谢第60页

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