| 目录 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 本文所用缩写说明 | 第10-12页 |
| 一 前言 | 第12-19页 |
| 1 MAP30的研究进展 | 第12-14页 |
| ·抗病毒活性 | 第12-13页 |
| ·抗肿瘤活性 | 第13页 |
| ·抗微生物活性及其他 | 第13-14页 |
| ·提高植物抗病研究 | 第14页 |
| 2 花生转基因研究进展 | 第14-18页 |
| ·农杆菌介导转基因花生研究进展 | 第15页 |
| ·基因枪转基因花生研究进展 | 第15-16页 |
| ·电击转化法 | 第16页 |
| ·花粉管通道法 | 第16-17页 |
| ·直接转化法的研究进展 | 第17-18页 |
| 3 本实验研究的目的及意义 | 第18-19页 |
| 二 苦瓜MAP30基因的植物表达载体的构建及转化烟草的研究 | 第19-30页 |
| ·材料和方法 | 第19-23页 |
| ·材料 | 第19-20页 |
| ·方法 | 第20-23页 |
| ·结果和分析 | 第23-26页 |
| ·map30基因的获取 | 第23页 |
| ·植物表达载体pCAMBIA2303的酶切 | 第23-24页 |
| ·载体pCAMBIA2303与目的基因map30的酶连及验证 | 第24-25页 |
| ·琼脂糖凝胶DNA回收加压过滤法与试剂盒回收法比较 | 第25页 |
| ·重组子的转化和验证 | 第25-26页 |
| ·GV3101／pCAMBIA 2303-map30转化烟草的瞬时表达验证 | 第26页 |
| ·转化烟草的PCR检测 | 第26页 |
| ·讨论 | 第26-29页 |
| ·载体的酶切 | 第27页 |
| ·琼脂糖凝胶中回收DNA | 第27-28页 |
| ·pCAMBIA2303-map30转化农杆菌 | 第28页 |
| ·农杆菌质粒的提取 | 第28-29页 |
| ·农杆菌GV3101／pCAMBIA 2303-map30转化烟草 | 第29页 |
| ·小结 | 第29-30页 |
| 三 利用直接转化体系将外源基因导入花生的研究 | 第30-46页 |
| ·材料和方法 | 第30-34页 |
| ·材料 | 第30-31页 |
| ·方法 | 第31-34页 |
| ·结果和分析 | 第34-40页 |
| ·根癌农杆菌菌株培养及菌活力曲线的测定 | 第34-35页 |
| ·花生类GUG活性检测 | 第35页 |
| ·GUS瞬时表达筛选敏感花生品种 | 第35-36页 |
| ·农杆菌不同浓度以及侵染时间的侵染花生的效果 | 第36-37页 |
| ·预培养、共培养对花生直接转化的影响 | 第37页 |
| ·添加半胱氨酸对花生直接转化的影响 | 第37-38页 |
| ·农杆菌介导直接转化转基因操作对萌发的影响,转化花生苗的移栽培养 | 第38页 |
| ·用直接转化体系转化map30基因 | 第38-40页 |
| ·用直接转化体系转化mt1D基因 | 第40页 |
| ·讨论 | 第40-46页 |
| ·花生类GUS活性检测 | 第40-41页 |
| ·GUS瞬时表达筛选敏感花生品种 | 第41页 |
| ·不同浓度的农杆菌侵染花生的效果 | 第41-42页 |
| ·侵染时间对遗传转化的影响 | 第42页 |
| ·预培养对遗传转化的影响 | 第42页 |
| ·共培养对遗传转化的影响 | 第42-43页 |
| ·添加半胱氨酸对遗传转化的影响 | 第43页 |
| ·农杆菌介导直接转化转基因操作对萌发的影响,转化花生苗的移栽培养 | 第43页 |
| ·转化体系建立和优化小结 | 第43-44页 |
| ·用直接转化体系转化map30基因 | 第44-45页 |
| ·直接转化体系转化mt1D基因 | 第45-46页 |
| 四 根癌农杆菌介导MAP30基因叶盘法转化花生 | 第46-49页 |
| ·材料和方法 | 第46-47页 |
| ·材料 | 第46页 |
| ·方法 | 第46-47页 |
| ·结果和分析 | 第47-48页 |
| ·讨论 | 第48-49页 |
| 五 展望 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 附图 | 第59-61页 |
