| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-9页 |
| 引言 | 第9-12页 |
| 第一部分 高原低氧诱发的脑水肿及其病理生理学特征 | 第12-24页 |
| 一、实验材料 | 第12-13页 |
| (一) 主要仪器设备 | 第12页 |
| (二) 主要试剂 | 第12-13页 |
| (三) 实验动物 | 第13页 |
| 二、实验方法 | 第13-15页 |
| (一) 高原低氧诱发脑水肿 | 第13页 |
| (二) 干湿重法测定低氧暴露大鼠脑水含量 | 第13-14页 |
| (三) 磁共振扩散加权成像(DWI)检查 | 第14页 |
| (四) 低氧暴露大鼠脑组织形态学检查 | 第14-15页 |
| (五) 统计分析 | 第15页 |
| 三、实验结果 | 第15-19页 |
| (一) 低氧暴露对大鼠脑水含量的影响 | 第16页 |
| (二) 低氧暴露后大鼠脑磁共振扩散加权成像(DWI)的变化 | 第16-18页 |
| 1．低氧暴露后大鼠脑磁共振扩散加权成像(DWI)的变化 | 第16-18页 |
| 2．低氧暴露后大鼠脑表观扩散系数(ADC)的变化 | 第18页 |
| (三) 低氧暴露后大鼠脑组织形态学的变化 | 第18-19页 |
| 四、讨论 | 第19-23页 |
| 小结 | 第23-24页 |
| 第二部分 低氧脑水肿时大鼠脑组织VEGF、AQP1和AQP4基因和蛋白表达的变化 | 第24-39页 |
| 一、实验材料 | 第24-25页 |
| (一) 主要仪器设备 | 第24页 |
| (二) 主要试剂 | 第24-25页 |
| (三) 实验动物 | 第25页 |
| 二、实验方法 | 第25-28页 |
| (一) 高原低氧诱发脑水肿 | 第25页 |
| (二) 半定量RT-PCR | 第25-28页 |
| 1．引物设计 | 第25-26页 |
| 2．总RNA的提取 | 第26-27页 |
| 3．总RNA浓度分析和纯度鉴定 | 第27页 |
| 4．RT-PCR | 第27-28页 |
| (三) 免疫组织化学测定 | 第28页 |
| (四) 统计分析 | 第28页 |
| 三、实验结果 | 第28-35页 |
| (一) 低氧脑水肿时大鼠脑VEGF、AQP1和AQP4 mRNA表达的变化 | 第28-31页 |
| 1．RNA的纯度鉴定 | 第28-29页 |
| 2．RNA完整性的鉴定 | 第29页 |
| 3．低氧脑水肿时VEGF、AQP1和AQP4 mRNA表达的变化 | 第29-31页 |
| (二) 低氧脑水肿时大鼠脑VEGF、AQP1和AQP4表达及其分布变化 | 第31-35页 |
| 1．低氧暴露对大鼠脑VEGF表达和分布的影响 | 第31页 |
| 2．低氧暴露对大鼠脑AQP1表达和分布的影响 | 第31-32页 |
| 3．低氧暴露对大鼠脑AQP4表达和分布的影响 | 第32-35页 |
| 四、讨论 | 第35-38页 |
| 小结 | 第38-39页 |
| 第三部分 低氧脑水肿时血脑屏障超微结构的变化 | 第39-46页 |
| 一、实验材料 | 第39-40页 |
| (一) 主要仪器设备 | 第39页 |
| (二) 主要试剂 | 第39-40页 |
| (三) 实验动物 | 第40页 |
| 二、实验方法 | 第40-41页 |
| (一) 高原低氧诱发脑水肿 | 第40页 |
| (二) 低氧暴露大鼠脑血脑屏障超微结构的检查 | 第40-41页 |
| (三) 统计分析 | 第41页 |
| 三、实验结果 | 第41-43页 |
| 低氧脑水肿时血脑屏障超微结构的变化 | 第41-43页 |
| 四、讨论 | 第43-45页 |
| 小结 | 第45-46页 |
| 结论 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第48-55页 |
| 缩略词表 | 第55-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 文献综述 | 第58-67页 |
| 学术论文 | 第67-76页 |
| 硕士期间发表和待发表的文章及参加的学术会议 | 第76-77页 |
