| 第一章 文献综述 | 第1-29页 |
| 1 国内外研究现状分析 | 第16-26页 |
| ·小麦籽粒硬度 | 第16-22页 |
| ·小麦籽粒胚乳结构与硬度 | 第16-17页 |
| ·小麦籽粒硬度的生化基础 | 第17-19页 |
| ·Friabilin／Puroindolines蛋白与小麦籽粒硬度 | 第17-18页 |
| ·脂类物质与籽粒硬度 | 第18页 |
| ·戊聚糖与籽粒硬度的关系 | 第18-19页 |
| ·小麦籽粒硬度的遗传及其分子机理 | 第19-20页 |
| ·小麦近缘种属的Puroindoline蛋白及其基因的研究 | 第20-21页 |
| ·籽粒质地(硬度)与小麦品质的关系 | 第21页 |
| ·环境对籽粒硬度的影响 | 第21页 |
| ·Puroindolines蛋白与植物的抗病性 | 第21-22页 |
| ·小麦籽粒多酚氧化酶(Polyphenol oxidase,PPO) | 第22-26页 |
| ·小麦PPO对品质的影响 | 第22页 |
| ·多酚氧化酶的分类 | 第22-23页 |
| ·PPO在小麦体内的分布和变化 | 第23页 |
| ·PPO的生理生化功能 | 第23页 |
| ·小麦籽粒PPO提取与活性测定 | 第23-24页 |
| ·PPO活性的影响因素 | 第24-25页 |
| ·小麦PPO遗传及分子生物学研究 | 第25-26页 |
| 2 立论依据、研究方案 | 第26-29页 |
| ·立论依据 | 第26-27页 |
| ·研究方案 | 第27-29页 |
| ·研究目标 | 第27页 |
| ·研究内容 | 第27-29页 |
| 第二章 小麦籽粒硬度的研究 | 第29-53页 |
| 第一节 小麦籽粒Puroindolines蛋白的提取与分离检測 | 第29-35页 |
| 1 材料与方法 | 第29-31页 |
| ·试验材料 | 第29-31页 |
| ·Puroindolines蛋白的提取及分离 | 第31页 |
| ·小麦籽粒硬度测定 | 第31页 |
| 2 结果和分析 | 第31-33页 |
| ·Puroindolines蛋白的普通SDS-PAGE凝胶电泳 | 第31-32页 |
| ·Puroindolines蛋白的Urea-SDS-PAGE电泳 | 第32-33页 |
| ·PinA、PinB蛋白电泳带型与籽粒硬度 | 第33页 |
| 3 讨论 | 第33-35页 |
| 第二节 小麦籽粒中Puroindolines蛋白的动态表达 | 第35-40页 |
| 1 材料与方法 | 第35-36页 |
| ·试验材料 | 第35-36页 |
| ·试验方法 | 第36页 |
| 2 结果与分析 | 第36-38页 |
| ·籽粒不同发育阶段PinA的PinB表达 | 第36-37页 |
| ·相同pina、pinb基因型(pina-D1a,pinb-D1a／pinb-D1p)表达及硬度差异 | 第37-38页 |
| 3 讨论 | 第38-40页 |
| 第三节 pina、pinb等位基因变异的研究 | 第40-49页 |
| 1 材料与方法 | 第40-42页 |
| ·试验材料 | 第40页 |
| ·试验方法 | 第40-42页 |
| 2 结果与分析 | 第42-47页 |
| ·Puroindolines(PinA、PinB)蛋白的分离和检测 | 第42页 |
| ·Puroindolines基因的PCR扩增及检测 | 第42-45页 |
| ·pina、pinb的变异分析 | 第45-47页 |
| ·推导氨基酸的初步分析 | 第47页 |
| 3 讨论 | 第47-49页 |
| 第四节 小麦籽粒硬度与其它品质性状的相关分析 | 第49-53页 |
| 1 材料与方法 | 第49-50页 |
| ·材料 | 第49页 |
| ·品质测定方法 | 第49-50页 |
| ·数据用SPSS统计软件分析 | 第50页 |
| 2 结果与分析 | 第50-51页 |
| ·品质性状变异 | 第50页 |
| ·籽粒硬度与其它品质性状的相关分析 | 第50页 |
| ·碱水保持力(AWRC)与其他品质性状的回归分析 | 第50-51页 |
| ·SDS与其它品质性状的回归分析 | 第51页 |
| 3 结论与讨论 | 第51-53页 |
| 第三章 小麦籽粒多酚氧化酶研究 | 第53-96页 |
| 第一节 籽粒多酚氧化酶的提取与测定 | 第53-59页 |
| 1 材料与方法 | 第53-54页 |
| ·试验材料 | 第53页 |
| ·PPO提取与活性测定 | 第53-54页 |
| ·比较SDS和磷酸盐提取PPO活性的时间特性 | 第54页 |
| ·37℃水浴和室温下，PPO活性的时间特性 | 第54页 |
| 2 结果与分析 | 第54-57页 |
| ·不同方法提取PPO活性比较 | 第54-55页 |
| ·SDS与磷酸盐提取全麦粉PPO的活性变化及时间特性 | 第55-56页 |
| ·室温下和37℃水浴条件下PPO吸光度的变化 | 第56-57页 |
| 3 讨论 | 第57-59页 |
| 第二节 普通小麦及其近缘种属PPO活性的变异研究 | 第59-64页 |
| 1 材料和方法 | 第59-61页 |
| ·试验材料 | 第59-61页 |
| ·试验方法 | 第61页 |
| 2 结果与分析 | 第61-63页 |
| ·普通小麦及其近缘种属的PPO活性变异分析 | 第61-62页 |
| ·PPO活性分布 | 第62-63页 |
| 3 讨论 | 第63-64页 |
| 第三节 小麦多酚氧化酶基因初步定位 | 第64-67页 |
| 1 材料和方法 | 第64-65页 |
| ·试验材料 | 第64页 |
| ·试验方法 | 第64-65页 |
| 2 结果与分析 | 第65-66页 |
| ·PPO-1和PPO-2基因的染色体定位 | 第65-66页 |
| 3 讨论 | 第66-67页 |
| 第四节 小麦PPO-1和PPO-2基因多态性与PPO活性关系的研究 | 第67-74页 |
| 1 材料与方法 | 第67-68页 |
| 2 结果与分析 | 第68-72页 |
| ·PPO-1和PPO-2多态性分析 | 第68-70页 |
| ·PPO-1和PPO-2多态性分布及与PPO活性的关系 | 第70-72页 |
| 3 讨论 | 第72-74页 |
| 第五节 籽粒PPO基因分子机理及动态表达的初步研究 | 第74-86页 |
| 1 材料与方法 | 第74-77页 |
| ·试验材料 | 第74-75页 |
| ·试验方法 | 第75-77页 |
| 2 结果与分析 | 第77-84页 |
| ·PPO-2基因功能区序列分析 | 第77-79页 |
| ·PPO一2功能区域推导氨基酸分析 | 第79-81页 |
| ·小麦籽粒PPO同工酶分析 | 第81-83页 |
| ·籽粒不同发育阶段PPO同工酶的表达 | 第81-82页 |
| ·成熟籽粒及萌动时期PPO同工酶分析 | 第82-83页 |
| ·PPO-2基因转录水平的动态分析 | 第83-84页 |
| 3 讨论 | 第84-86页 |
| 第六节 抗坏血酸对籽粒PPO活性的影响 | 第86-91页 |
| 1 材料与方法 | 第86-87页 |
| ·试验材料 | 第86页 |
| ·PPO提取、活性测定及Vc对其的影响 | 第86-87页 |
| 2 结果与分析 | 第87-90页 |
| ·分光光度法与酶标仪法测定PPO活性的比较 | 第87-88页 |
| ·Vc对籽粒PPO活性的影响 | 第88-89页 |
| ·Vc对籽粒PPO活性抑制的持续性和稳定性 | 第89-90页 |
| 3 讨论 | 第90-91页 |
| 第七节 抗坏血酸对面片色泽的影响 | 第91-96页 |
| 1 材料与方法 | 第91-92页 |
| ·试验材料 | 第91页 |
| ·制粉 | 第91页 |
| ·面片的制作 | 第91页 |
| ·面片色泽测定 | 第91-92页 |
| ·不同Vc含量对面片色泽的影响 | 第92页 |
| ·Vc对面片色泽、PPO活性的持续性影响 | 第92页 |
| 2 结果与分析 | 第92-94页 |
| ·不同含量的Vc对面片色泽的影响 | 第92-93页 |
| ·Vc处理后，面片在0-12h内色泽的变化 | 第93-94页 |
| ·Vc对面片PPO活性的影响 | 第94页 |
| 3 讨论 | 第94-96页 |
| 结论 | 第96-98页 |
| 参考文献 | 第98-111页 |
| 致谢 | 第111-112页 |
| 个人简介 | 第112页 |
