第一章 绪论 | 第1-30页 |
1.1 骨组织工程 | 第9-15页 |
1.1.1 组织工程发展背景及其原理和方法 | 第9页 |
1.1.2 骨组织 | 第9-10页 |
1.1.3 组织工程骨的基本原理与方法 | 第10-11页 |
1.1.4 骨组织工程支架材料 | 第11-15页 |
1.1.4.1 人工合成材料 | 第12-14页 |
1.1.4.1.1 无机材料 | 第12页 |
1.1.4.1.2 合成高分子材料 | 第12-13页 |
1.1.4.1.3 复合材料 | 第13-14页 |
1.1.4.2 天然生物材料 | 第14-15页 |
1.1.4.2.1 胶原 | 第14页 |
1.1.4.2.2 脱钙骨基质 | 第14页 |
1.1.4.2.3 壳聚糖 | 第14-15页 |
1.1.4.2.4 珊瑚 | 第15页 |
1.2 软骨组织工程 | 第15-17页 |
1.2.1 种子细胞 | 第15-16页 |
1.2.2 细胞支架材料 | 第16-17页 |
1.2.3 细胞因子 | 第17页 |
1.3 水凝胶在组织工程中的应用 | 第17-28页 |
1.3.1 水凝胶的分类 | 第18-19页 |
1.3.2 水凝胶的制备 | 第19页 |
1.3.3 水凝胶材料在组织工程中的应用 | 第19-25页 |
1.3.3.1 天然水凝胶 | 第19-25页 |
1.3.3.1.1 壳聚糖 | 第19-20页 |
1.3.3.1.2 胶原和明胶 | 第20-21页 |
1.3.3.1.3 透明质酸 | 第21-22页 |
1.3.3.1.4 海藻酸盐 | 第22-24页 |
1.3.3.1.5 琼脂糖 | 第24页 |
1.3.3.1.6 纤维蛋白 | 第24-25页 |
1.3.4 合成水凝胶 | 第25-27页 |
1.3.4.1 聚丙烯酸类及其衍生物 | 第25页 |
1.3.4.2 聚乙烯醇 | 第25-26页 |
1.3.4.3 聚氧化乙烯及其衍生共聚物 | 第26页 |
1.3.4.4 聚磷腈 | 第26-27页 |
1.3.4.5 多肽 | 第27页 |
1.3.5 水凝胶应用前景展望 | 第27-28页 |
1.4 传统中药在组织工程领域的应用前景 | 第28页 |
1.5 本论文工作的提出 | 第28-30页 |
第二章 盐酸化壳聚糖的制备与表征 | 第30-37页 |
2.1 引言 | 第30页 |
2.2 实验部分 | 第30-33页 |
2.2.1 主要原料仪器 | 第30-31页 |
2.2.2 盐酸化壳聚糖(CH)的制备 | 第31-32页 |
2.2.2.1 壳聚糖脱乙酰度(D.D)的测定 | 第31-32页 |
2.2.2.2 壳聚糖的分子量的测定 | 第32页 |
2.2.2.3 盐酸化壳聚糖的制备 | 第32页 |
2.2.3 盐酸化壳聚糖的性能与结构的表征 | 第32-33页 |
2.2.3.1 水溶性 | 第32页 |
2.2.3.2 红外吸收光谱(FTIR)分析 | 第32页 |
2.2.3.3 X 射线(XRD)分析 | 第32-33页 |
2.2.3.4 元素含量分析 | 第33页 |
2.3 结果与讨论 | 第33-36页 |
2.3.1 壳聚糖的特性 | 第33-34页 |
2.3.2 水溶性 | 第34页 |
2.3.3 红外吸收光谱(FTIR)分析 | 第34页 |
2.3.4 X 射线衍射(XRD)分析 | 第34-36页 |
2.3.5 元素含量分析 | 第36页 |
2.4 本章结论 | 第36-37页 |
第三章 可注射性壳聚糖基复合组成物 | 第37-53页 |
3.1 引言 | 第37页 |
3.2 实验部分 | 第37-40页 |
3.2.1 主要原料与仪器 | 第37-38页 |
3.2.2 复合组成物的制备 | 第38页 |
3.2.3 干复合组成物的制备 | 第38-39页 |
3.2.4 傅立叶变换红外光谱(FTIR)分析 | 第39页 |
3.2.5 X 射线衍射(XRD)分析 | 第39页 |
3.2.6 pH 值的测定 | 第39页 |
3.2.7 溶胶-凝胶相转变温度及转变速率的测定 | 第39页 |
3.2.8 SEM 测试 | 第39页 |
3.2.9 凝胶溶胀度测试 | 第39-40页 |
3.2.10 流变学测试 | 第40页 |
3.3 结果与讨论 | 第40-52页 |
3.3.1 FTIR 分析 | 第40页 |
3.3.2 XRD 分析 | 第40-41页 |
3.3.3 溶胶、凝胶相转变机理 | 第41页 |
3.3.4 pH 值、温度及壳聚糖的性质对体系溶胶-凝相转变的影响 | 第41-46页 |
3.3.5 β-TCP 对复合体系的影响 | 第46页 |
3.3.6 溶胀性能分析 | 第46-48页 |
3.3.7 流变学分析 | 第48-51页 |
3.3.8 干凝胶形貌的观察 | 第51-52页 |
3.4 本章结论 | 第52-53页 |
第四章 可注射性壳聚糖基复合组成物的生物相容性及软骨修复性能 | 第53-62页 |
4.1 引言 | 第53-54页 |
4.2 实验部分 | 第54-55页 |
4.2.1 主要原料与仪器 | 第54页 |
4.2.2 材料与方法 | 第54-55页 |
4.2.2.1 材料的制备与灭菌 | 第54-55页 |
4.2.3 实验动物分组 | 第55页 |
4.2.4 手术方法 | 第55页 |
4.2.5 检查项目 | 第55页 |
4.3 结果与讨论 | 第55-61页 |
4.4 本章结论 | 第61-62页 |
第五章 中药淫羊藿缓释剂的制备及体外释放行为 | 第62-78页 |
5.1 引言 | 第62-63页 |
5.2 实验部分 | 第63-66页 |
5.2.1 主要原料与仪器 | 第63-64页 |
5.2.2 实验方法 | 第64-66页 |
5.2.2.1 测定波长的选择 | 第64页 |
5.2.2.2 淫羊藿标准曲线的绘制 | 第64页 |
5.2.2.3 淫羊藿壳聚糖/明胶溶液的制备 | 第64-65页 |
5.2.2.4 含淫羊藿壳聚糖/明胶微球的制备 | 第65页 |
5.2.2.5 傅立叶变换红外光谱(FTIR) | 第65页 |
5.2.2.6 显微镜和扫描电镜(SEM)观察 | 第65页 |
5.2.2.7 微球吸水溶胀 | 第65页 |
5.2.2.8 微球载药量的测定 | 第65页 |
5.2.2.9 淫羊藿壳聚糖/明胶微球的体外释放 | 第65-66页 |
5.2.2.10 含淫羊藿CH-GP 凝胶的制备 | 第66页 |
5.2.2.11 含淫羊藿CH-GP 凝胶的体外释放 | 第66页 |
5.3 结果与讨论 | 第66-76页 |
5.3.1 药物缓控释机理 | 第66页 |
5.3.2 测定波长的确定 | 第66-67页 |
5.3.3 标准曲线的绘制 | 第67页 |
5.3.4 微球制备的影响因素 | 第67-70页 |
5.3.4.1 搅拌速度的影响 | 第67-68页 |
5.3.4.2 乳化剂用量的影响 | 第68-69页 |
5.3.4.3 交联剂用量的影响 | 第69-70页 |
5.3.5 微球大小及形貌 | 第70-71页 |
5.3.6 FTIR 分析 | 第71页 |
5.3.7 微球吸水溶胀 | 第71页 |
5.3.8 载药微球的药物含量 | 第71-73页 |
5.3.9 体外释放 | 第73-76页 |
5.3.9.1 载药微球的体外释放 | 第73-76页 |
5.3.9.1.1 粒径对微球释放性能的影响 | 第73-74页 |
5.3.9.1.2 药/材比对微球释放的影响 | 第74页 |
5.3.9.1.3 戊二醛加入量对微球释放性能的影响 | 第74-76页 |
5.3.9.2 含药CH-GP 凝胶的体外释放 | 第76页 |
5.4 本章结论 | 第76-78页 |
全文主要结论 | 第78-79页 |
参考文献 | 第79-85页 |
攻读硕士研究生期间完成的论文 | 第85-86页 |
致谢 | 第86页 |