| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 主要符号表 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-21页 |
| 1.1 白血病概述及治疗现状 | 第13页 |
| 1.2 白血病向DC定向诱导分化研究现状 | 第13-15页 |
| 1.2.1 树突状细胞（DCs）的功能 | 第14-15页 |
| 1.2.2 白血病患者自身DC功能缺陷 | 第15页 |
| 1.2.3 白血病源性DC诱导分化进展及局限 | 第15页 |
| 1.3 JAK/STAT信号通路在DC分化中的作用 | 第15-18页 |
| 1.3.1 DC发育分化过程 | 第16-17页 |
| 1.3.2 STAT信号通路在DC分化中的作用 | 第17-18页 |
| 1.4 中药诱导白血病细胞向DC分化的研究进展 | 第18-21页 |
| 实验材料与方法 | 第21-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-23页 |
| 2.1.1 细胞系 | 第21页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第21页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第21-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-33页 |
| 2.2.1 白血病源DC诱导敏感细胞株筛选 | 第23-24页 |
| 2.2.2 THP-1 来源DC分化关键机制 | 第24-30页 |
| 2.2.3 人参皂苷Ro促进白血病源DC分化的作用与关键机制 | 第30-31页 |
| 2.2.4 统计方法 | 第31-33页 |
| 实验结果 | 第33-49页 |
| 3.1 THP-1 为诱导白血病源DC的敏感细胞株 | 第33-38页 |
| 3.1.1 白血病细胞株经CK诱导后出现明显树突状细胞形态学改变 | 第33页 |
| 3.1.2 白血病细胞株经CK诱导后DC特征性分子CD1a的表达 | 第33-34页 |
| 3.1.3 白血病细胞株经CK诱导后MHC-Ⅱ类分子的表达 | 第34页 |
| 3.1.4 白血病细胞株经CK诱导后CD83的表达 | 第34-35页 |
| 3.1.5 白血病细胞株经CK诱导后CD86/CD80的表达 | 第35-37页 |
| 3.1.6 白血病细胞株经CK诱导后CCR7的表达 | 第37-38页 |
| 3.2 STAT5信号通路在THP-1 来源DC定向分化中的作用 | 第38-41页 |
| 3.2.1 THP-1 来源DC表面共刺激、功能性分子及MHC-Ⅱ类分子mRNA表达 | 第38-39页 |
| 3.2.2 THP-1 培养上清DC分泌细胞因子蛋白表达水平 | 第39页 |
| 3.2.3 THP-1 来源DC STAT5蛋白表达及磷酸化水平 | 第39-40页 |
| 3.2.4 THP-1 来源DC特异性转录因子Id2的表达 | 第40-41页 |
| 3.3 人参皂苷Ro促进白血病源DC分化的作用 | 第41-46页 |
| 3.3.0 人参皂苷Ro作用后THP-1 细胞形态变化 | 第41-42页 |
| 3.3.1 人参皂苷Ro作用后THP-1 来源DC表面特征性分子CD1a表达 | 第42页 |
| 3.3.2 人参皂苷Ro作用后THP-1 来源DC表面MHC-Ⅱ类分子的表达 | 第42-43页 |
| 3.3.3 人参皂苷Ro作用后THP-1 来源DC表面共刺激分子CD86表达 | 第43-44页 |
| 3.3.4 人参皂苷Ro作用后THP-1 来源DC中CD1a、CD86、MHC-Ⅱ表达 | 第44-45页 |
| 3.3.5 人参皂苷Ro作用后THP-1 来源DC分泌TNFα、IL-6 的水平 | 第45-46页 |
| 3.4 人参皂苷Ro对STAT5信号通路的影响 | 第46-49页 |
| 3.4.1 人参皂苷Ro对STAT5表达的影响 | 第46-47页 |
| 3.4.2 人参皂苷Ro对Id2表达的影响 | 第47-49页 |
| 讨论 | 第49-53页 |
| 结论 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-59页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第59-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
