| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 1 引言 | 第10-17页 |
| ·杨树提高生根能力的遗传改良 | 第10-11页 |
| ·常规育种 | 第10页 |
| ·通过生物技术手段来改变杨树的遗传转化 | 第10-11页 |
| ·rol 基因研究概况 | 第11-15页 |
| ·rol 基因 | 第11-13页 |
| ·rol 基因在遗传改良中的应用 | 第13-15页 |
| ·本试验研究目的及意义 | 第15-17页 |
| ·研究背景 | 第15-16页 |
| ·目的、意义 | 第16-17页 |
| 2 发根农杆菌 Ri 质粒 rol 基因介导 741 杨遗传体系的优化 | 第17-28页 |
| ·材料与方法 | 第17-18页 |
| ·研究材料 | 第17-18页 |
| ·研究方法 | 第18-22页 |
| ·菌株的保存与活化 | 第18页 |
| ·诱导741 杨叶片不定芽最佳培养基的筛选 | 第18-19页 |
| ·卡那霉素临界浓度筛选 | 第19页 |
| ·抗生素浓度筛选 | 第19页 |
| ·菌株培养和感染液准备 | 第19页 |
| ·农杆菌侵染和共培养 | 第19页 |
| ·影响741 杨遗传转化效率的因素 | 第19-20页 |
| ·转化体的筛选和植株再生 | 第20页 |
| ·转化植株的PCR 检测 | 第20-22页 |
| ·结果与分析 | 第22-27页 |
| ·不同培养基对叶片诱导不定芽的影响 | 第22页 |
| ·卡那霉素临界浓度的筛选 | 第22-23页 |
| ·不同浓度头孢霉素抑菌效果及对叶片分化不定芽的影响 | 第23-24页 |
| ·侵染时间和共培养时间对叶片分化的影响 | 第24-25页 |
| ·预培养对叶片转化率的影响 | 第25页 |
| ·添加乙酰丁香酮对叶片转化率的影响 | 第25页 |
| ·PCR 检测结果 | 第25-27页 |
| ·讨论与小结 | 第27-28页 |
| 3 转基因无性系的生理特性分析 | 第28-40页 |
| ·材料 | 第28页 |
| ·试验方法 | 第28-29页 |
| ·发根和苗高生长状况 | 第28页 |
| ·叶绿素检测 | 第28-29页 |
| ·荧光检测 | 第29页 |
| ·激素检测 | 第29页 |
| ·结果与分析 | 第29-37页 |
| ·转多基因741 杨组培苗生根能力分析 | 第29-31页 |
| ·转基因植株组培苗苗高生长变化 | 第31-32页 |
| ·转基因741 杨组培苗叶绿素含量分析 | 第32-34页 |
| ·转基因741 杨组培苗荧光特性分析 | 第34页 |
| ·转基因株系叶绿素与荧光相关性分析 | 第34-35页 |
| ·转基因株系激素含量分析 | 第35-37页 |
| ·结论与讨论 | 第37-40页 |
| 4 转基因杨树中农杆菌残存状况分析 | 第40-45页 |
| ·材料与方法 | 第40-41页 |
| ·实验材料 | 第40页 |
| ·转化植株移栽 | 第40页 |
| ·转化植株的分子生物学检测 | 第40页 |
| ·转化植株各部分组织细菌培养 | 第40-41页 |
| ·转化植株与农杆菌的DNA 提取及PCR 检测 | 第41页 |
| ·结果与讨论 | 第41-44页 |
| ·残存农杆菌在抗生素环境中的存活状况 | 第41-43页 |
| ·继代时期转基因植株体表及体内农杆菌的存活及分布 | 第43页 |
| ·移栽后农杆菌的存活及分布状况 | 第43-44页 |
| ·残存农杆菌对转化植株PCR 检测的影响 | 第44页 |
| ·结论与讨论 | 第44-45页 |
| 5 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-50页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第50-51页 |
| 作者简介 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52页 |