缩写词 | 第1-7页 |
摘要 | 第7-8页 |
Abstract | 第8-9页 |
第一章 文献综述 | 第9-33页 |
·紫外线对生物的影响 | 第9-12页 |
·紫外线对人类及其他动物的影响 | 第9-10页 |
·紫外线对植物的影响 | 第10-11页 |
·紫外线的益处 | 第11-12页 |
·引起DNA损伤的化学诱变剂 | 第12页 |
·UV-B对植物的损伤及相应的应答机制 | 第12-22页 |
·紫外吸收物质合成相应突变体对UV-B的应答 | 第13-14页 |
·类黄酮类物质相关突变体对UV-B的应答 | 第13页 |
·芥子酸酯类衍生物相关突变体对UV-B的应答 | 第13-14页 |
·抗氧化物质抵御UV-B损伤 | 第14-15页 |
·UV-B与DNA损伤 | 第15-16页 |
·DNA的修复机制 | 第16-22页 |
·光修复 | 第17-18页 |
·剪切修复 | 第18-20页 |
·重组修复 | 第20-21页 |
·错配修复 | 第21页 |
·诱导修复 | 第21-22页 |
·拟南芥中的WD40蛋白家族 | 第22-30页 |
·与配子体发育相关的WD40蛋白 | 第24-25页 |
·与胚胎发育相关的WD40蛋白 | 第25-26页 |
·与初生和次生发育相关的WD40蛋白 | 第26页 |
·参与花发育和开花过程的WD40蛋白 | 第26-27页 |
·与信号转导相关的WD40蛋白 | 第27-29页 |
·参与细胞内转运的WD40蛋白 | 第29页 |
·参与DNA损伤修复的WD40蛋白 | 第29-30页 |
·CSA蛋白 | 第30页 |
·泛素连接酶 | 第30-32页 |
·HECT家族泛素连接酶 | 第30-31页 |
·RING-finger家族泛素连接酶 | 第31-32页 |
本论文研究的目的和意义 | 第32-33页 |
第二章 材料和方法 | 第33-45页 |
·实验材料 | 第33-38页 |
·UV-B敏感突变体筛选及基因克隆 | 第33-34页 |
·CSAat1A和CSAat1B突变体 | 第34-35页 |
·转基因植株 | 第35页 |
·细菌 | 第35页 |
·载体 | 第35-37页 |
·有关仪器 | 第37页 |
·引物合成与DNA片段测序 | 第37-38页 |
·药品和试剂配制 | 第38页 |
·实验方法 | 第38-45页 |
·拟南芥培养条件 | 第38-39页 |
·UV-B处理表型分析 | 第39页 |
·MMS处理表型分析 | 第39页 |
·农杆菌侵染 | 第39页 |
·洋葱表皮细胞中荧光蛋白瞬时表达 | 第39-40页 |
·原生质体瞬时表达 | 第40-41页 |
·RNA提取和RT-PCR | 第41页 |
·Co-IP分析 | 第41页 |
·转基因植株的GUS染色实验 | 第41-42页 |
·酵母双杂交(Y2H)实验方法 | 第42-43页 |
·酶联免疫吸附实验(ELISA) | 第43页 |
·Southern Blot杂交实验 | 第43-45页 |
第三章 实验结果 | 第45-82页 |
·突变体筛选及基因克隆 | 第45-47页 |
·序列对比 | 第47-48页 |
·CSAat1A缺失突变体表型分析 | 第48-50页 |
·CSAat1B缺失突变体表型分析 | 第50-52页 |
·CSAat1A和CSAat1B的组织特异表达和亚细胞定位 | 第52-54页 |
·CSAat1A和CSAat1B能与CUL4-DDB1形成复合物 | 第54-59页 |
·遗传学分析 | 第54-56页 |
·生化分析 | 第56-59页 |
·WDxR motif对CSAat1A和CSAat1B与CUL4-DDB1A形成复合物起着重要作用 | 第59-64页 |
·R2参与复合物的形成 | 第59-60页 |
·WDxR motif的重要作用 | 第60-64页 |
·WDxR motif对CSAat1A和CSAat1B响应UV-B和MMS处理造成的DNA损伤起着重要作用 | 第64-76页 |
·CSAat1A和CSAat1B不同部分蛋白转基因植株表型分析 | 第64-66页 |
·CSAat1A和CSAat1B的WDxR motif中各点突变转基因植株UV-B表型分析 | 第66-71页 |
·CSAat1A和CSAat1B的WDxR motif中各点突变转基因植株MMS表型分析 | 第71-76页 |
·CSAat1A和CSAat1B在植物体内形成复合物 | 第76-82页 |
第四章 讨论和展望 | 第82-84页 |
参考文献 | 第84-99页 |
致谢 | 第99-101页 |
发表文章 | 第101页 |