中文摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
缩略语/符号说明 | 第10-11页 |
前言 | 第11-18页 |
研究现状 | 第12-16页 |
研究目的 | 第16-17页 |
研究方法 | 第17-18页 |
一、肝癌干细胞的分离与鉴定 | 第18-38页 |
1.1 对象和方法 | 第18-21页 |
1.1.1 研究对象 | 第18页 |
1.1.2 新鲜肝癌组织制备单细胞悬液 | 第18页 |
1.1.3 SP细胞分选 | 第18-19页 |
1.1.4 细胞侵袭实验及迁移实验 | 第19页 |
1.1.5 细胞成球培养实验 | 第19页 |
1.1.6 细胞增殖实验 | 第19页 |
1.1.7 NOD/SCID小鼠成瘤实验 | 第19-20页 |
1.1.8 肝癌干细胞基因表达谱检测 | 第20页 |
1.1.9 统计学处理 | 第20-21页 |
1.2 结果 | 第21-31页 |
1.2.1 从HepG2细胞及肝癌新鲜组织中分选SP细胞 | 第21-22页 |
1.2.2 细胞侵袭实验 | 第22-23页 |
1.2.3 细胞迁移实验 | 第23-25页 |
1.2.4 细胞成球培养实验 | 第25-27页 |
1.2.5 细胞增殖实验 | 第27-28页 |
1.2.6 NOD/SCID小鼠成瘤实验 | 第28-30页 |
1.2.7 肝癌干细胞基因表达谱检测 | 第30-31页 |
1.3 讨论 | 第31-37页 |
1.3.1 肝癌干细胞分选 | 第31-33页 |
1.3.2 肝癌干细胞鉴定 | 第33-35页 |
1.3.3 肝癌干细胞基因表达谱的特异性 | 第35-37页 |
1.4 小结 | 第37-38页 |
二、肝癌干细胞抵抗台盼蓝及索拉菲尼毒性的体外研究 | 第38-55页 |
2.1 对象和方法 | 第38-40页 |
2.1.1 研究对象 | 第38页 |
2.1.2 采用MTT法研究台盼蓝对HepG2细胞毒性 | 第38页 |
2.1.3 采用自渗透型微流控芯片研究台盼蓝对肝癌干细胞及非 SP 细胞毒性 | 第38-39页 |
2.1.4 采用“树”型微流控芯片研究索拉菲尼对肝癌干细胞及非 SP 细胞毒性 | 第39页 |
2.1.5 统计学处理 | 第39-40页 |
2.2 结果 | 第40-49页 |
2.2.1 不同浓度及时间台盼蓝对HepG2细胞抑制率 | 第40-41页 |
2.2.2 HepG2细胞中SP细胞抵抗台盼蓝毒性作用 | 第41-44页 |
2.2.3 HepG2细胞中SP细胞抵抗索拉菲尼毒性作用 | 第44-49页 |
2.3 讨论 | 第49-54页 |
2.3.1 台盼蓝在体外对肝癌细胞及肝癌干细胞的毒性作用 | 第49-50页 |
2.3.2 肝癌干细胞对索拉菲尼的药物抵抗 | 第50-52页 |
2.3.3 微流控芯片在肝癌干细胞对药物敏感性研究中的应用价值 | 第52-54页 |
2.4 小结 | 第54-55页 |
三、趋化因子CXCL2介导肝癌干细胞迁移的体外研究 | 第55-66页 |
3.1 对象和方法 | 第55-56页 |
3.1.1 研究对象 | 第55页 |
3.1.2 在微流控芯片中研究趋化因子CXCL12/CXCR4介导的HepG2SP细胞及非SP细胞趋化运动差异 | 第55页 |
3.1.3 在微流控芯片中研究CXCL12/CXCR4轴抑制剂AMD3100对HepG2SP细胞及非SP细胞趋化运动影响 | 第55-56页 |
3.1.4 统计学处理 | 第56页 |
3.2 结果 | 第56-60页 |
3.2.1 HepG2SP细胞逆CXCL12浓度梯度迁移 | 第56-58页 |
3.2.2 AMD3100抑制CXCL12介导HepG2SP细胞迁移作用 | 第58-60页 |
3.3 讨论 | 第60-65页 |
3.3.1 CXCL12/CXCR4轴与肝癌干细胞迁移特性 | 第60-62页 |
3.3.2 AMD3100对CXCL12/CXCR4介导肝癌干细胞迁移的抑制作用 | 第62-65页 |
3.4 小结 | 第65-66页 |
全文结论 | 第66-67页 |
论文创新点 | 第67-68页 |
参考文献 | 第68-76页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第76-77页 |
综述 肝癌干细胞与趋化因子研究进展 | 第77-94页 |
综述参考文献 | 第85-94页 |
致谢 | 第94-95页 |
个人简历 | 第95页 |