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NAD~+及NAD~+依赖性酶SIRT2在组织损伤中的作用及机制研究

摘要第3-6页
ABSTRACT第6-9页
第一章 绪论第15-34页
    1.1 转化医学研究第15页
    1.2 NAD~+与NAD~+依赖性酶SIRT第15-21页
        1.2.1 NAD~+的代谢第16-18页
        1.2.2 NAD~+与钙稳态第18-19页
        1.2.3 三类NAD~+依赖性酶第19-20页
        1.2.4 NAD~+及NAD~+依赖性酶的损伤保护作用第20-21页
    1.3 抗癌药物的毒副作用第21-26页
        1.3.1 癌症第21-22页
        1.3.2 癌症治疗第22-23页
        1.3.3 化疗第23页
        1.3.4 化疗药物第23-24页
        1.3.5 阿霉素第24-26页
    1.4 心肌缺血再灌注损伤的机制第26-30页
    1.5 神经炎症与SIRT第30-34页
        1.5.1 神经炎症第30-31页
        1.5.2 Sirtuins第31-32页
        1.5.3 SIRT2 与炎症第32-34页
第二章 NAD~+给药对抗癌药物盐酸阿霉素诱导的急性肝脏损伤的作用及机制研究第34-62页
    2.1 引言第34-35页
    2.2 材料第35页
        2.2.1 仪器材料第35页
        2.2.2 试剂材料第35页
        2.2.3 溶液配制第35页
        2.2.4 动物实验方案伦理学审批第35页
        2.2.5 实验动物第35页
        2.2.6 动物饲养第35页
    2.3 实验方法第35-44页
        2.3.1 动物实验第35-36页
        2.3.2 实验动物的牺牲及动物组织样本的获取第36页
        2.3.3 血清中谷草转氨酶(SGOT)活性的测定第36-37页
        2.3.4 肝脏冰冻切片第37页
        2.3.5 肝脏石蜡切片第37页
        2.3.6 新鲜肝脏组织中还原型谷胱甘肽(GSH)含量的测定第37-39页
        2.3.7 新鲜肝脏组织中谷胱甘肽还原酶(GR)活力的测定第39-40页
        2.3.8 新鲜肝脏组织中NAD~+含量的测定第40页
        2.3.9 新鲜肝脏组织中Caspase-3 活性测定第40-41页
        2.3.10 TUNEL(TdT-mediated dUTP Nick-End Labeling)染色第41-42页
        2.3.11 Caspase-3 免疫荧光染色第42-43页
        2.3.12 γ-H2AX免疫染色第43页
        2.3.13 实时荧光定量PCR(Realtime PCR)检测第43-44页
        2.3.14 数据统计方法第44页
    2.4 结果第44-58页
        2.4.1 NAD~+给药显著增加了盐酸阿霉素给药后小鼠的体重第44-45页
        2.4.2 NAD~+给药显著增加了盐酸阿霉素给药后小鼠的肝脏重量第45-46页
        2.4.3 NAD~+给药显著降低了盐酸阿霉素给药后小鼠血清中的谷草转氨酶含量第46-47页
        2.4.4 NAD~+给药显著地减少了盐酸阿霉素诱导的肝细胞凋亡第47-50页
        2.4.5 NAD~+给药显著减少了盐酸阿霉素诱导的肝脏细胞双链DNA损伤第50-51页
        2.4.6 NAD~+给药显著增加了盐酸阿霉素给药后肝脏组织中的NAD~+水平第51页
        2.4.7 NAD~+给药显著提高了盐酸阿霉素给药后肝脏组织中的抗氧化能力第51-54页
        2.4.8 NAC给药可以通过增强肝脏组织抗氧化能力来保护盐酸阿霉素诱导的急性肝脏损伤第54-56页
        2.4.9 NAM给药不能减少盐酸阿霉素诱导的急性肝脏损伤第56-58页
    2.5 小结与讨论第58-62页
第三章 NAD~+给药对大鼠心脏缺血/再灌注损伤的作用及机制研究第62-82页
    3.1 引言第62页
    3.2 材料第62-63页
        3.2.1 仪器材料第62页
        3.2.2 试剂材料第62-63页
        3.2.3 溶液配制第63页
        3.2.4 动物实验方案伦理学审批第63页
        3.2.5 实验动物第63页
        3.2.6 动物饲养第63页
    3.3 实验方法第63-70页
        3.3.1 动物分组及手术第63-64页
        3.3.2 实验动物的牺牲及动物组织样本的获取第64页
        3.3.3 心肌梗死体积的测定第64-65页
        3.3.4 血清中肌酸激酶、乳酸脱氢酶检测、心肌肌钙蛋白I的检测第65页
        3.3.5 心脏组织冰冻切片第65-66页
        3.3.6 新鲜心脏组织中超氧化物歧化酶(SOD)活力的测定第66页
        3.3.7 新鲜心脏组织中NAD~+含量的测定第66页
        3.3.8 TUNEL(TdT-mediated dUTP Nick-End Labeling)染色第66-67页
        3.3.9 Caspase-3 免疫荧光染色第67-68页
        3.3.10 Bax免疫组织化学染色第68页
        3.3.11 蛋白免疫印迹(Western Blot)第68-70页
        3.3.12 数据统计方法第70页
    3.4 结果第70-80页
        3.4.1 NAD~+给药显著地减少了心脏梗死体积第70-72页
        3.4.2 NAD~+给药显著地降低了血清中的c TnI水平第72-73页
        3.4.3 NAD~+给药并未明显影响血清中肌酸激酶和乳酸脱氢酶的含量第73-74页
        3.4.4 NAD~+给药显著减少了心肌细胞的凋亡第74-78页
        3.4.5 NAD~+给药显著增强了心肌细胞的抗氧化能力第78-80页
    3.5 小结与讨论第80-82页
第四章 NAD~+依赖性去乙酰化酶SIRT2 对小鼠神经炎症的作用及机制研究第82-103页
    4.1 引言第82页
    4.2 材料第82-83页
        4.2.1 仪器材料第82页
        4.2.2 试剂材料第82-83页
        4.2.3 溶液配制第83页
        4.2.4 动物实验方案伦理学审批第83页
        4.2.5 实验动物第83页
        4.2.6 动物饲养第83页
    4.3 实验方法第83-86页
        4.3.1 动物手术方法第83-84页
        4.3.2 实验动物的牺牲及动物组织样本的获取第84页
        4.3.3 大脑冰冻切片第84页
        4.3.4 Caspase-3 免疫荧光染色第84页
        4.3.5 TUNEL(TdT-mediated dUTP Nick-End Labeling)染色第84-85页
        4.3.6 免疫组织化学染色第85页
        4.3.7 炎症因子实时荧光定量PCR(Realtime PCR)检测第85页
        4.3.8 新鲜大脑组织细胞核蛋白与细胞浆抽提第85-86页
        4.3.9 蛋白免疫印迹(Western Blot)第86页
        4.3.10 数据统计方法第86页
    4.4 结果第86-100页
        4.4.1 SIRT2 的特异性抑制剂AGK2 显著地抑制了LPS诱导的小鼠大脑小胶质细胞激活第86-91页
        4.4.2 SIRT2 的特异性抑制剂AGK2 显著地降低了LPS诱导的小鼠大脑炎症因子的表达第91-92页
        4.4.3 SIRT2 的特异性抑制剂AGK2 显著地抑制了LPS诱导的小鼠大脑中的NF-κB炎症通路第92-94页
        4.4.4 SIRT2 的特异性抑制剂AGK2 显著减少了LPS诱导的小鼠大脑细胞凋亡第94-100页
    4.5 小结与讨论第100-103页
第五章 全文总结第103-109页
    5.1 研究内容与主要结论第103-106页
        5.1.1 NAD~+给药对抗癌药物盐酸阿霉素诱导的肝脏毒性的作用及机制研究第103-104页
        5.1.2 NAD~+给药对大鼠心脏缺血/再灌注损伤的作用及机制研究第104-105页
        5.1.3 NAD~+依赖性去乙酰化酶SIRT2 对小鼠神经炎症的作用及机制研究第105-106页
    5.2 研究展望第106-109页
参考文献第109-128页
附录一 实验仪器及生产公司第128-130页
附录二 主要实验试剂及生产公司第130-132页
附录三 相关溶液配制第132-133页
附录四 中英文缩写字母表第133-136页
致谢第136-137页
攻读学位期间发表的学术论文及发明专利申请情况第137-140页

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