| 中文摘要 | 第1-13页 |
| 英文摘要 | 第13-17页 |
| 本文的主要创新点 | 第17-18页 |
| 第一章 绪论 | 第18-53页 |
| §1.1 细胞图像分析 | 第18-34页 |
| ·扫描电化学显微镜技术 | 第19-28页 |
| ·扫描电化学显微镜的工作原理 | 第20-21页 |
| ·扫描电化学显微镜的实验装置 | 第21-23页 |
| ·单细胞的扫描电化学显微镜研究 | 第23-28页 |
| ·光学显微镜细胞图像分析 | 第28-32页 |
| ·明场显微镜 | 第29页 |
| ·荧光显微镜 | 第29页 |
| ·激光共聚焦显微镜 | 第29-30页 |
| ·多光子荧光显微镜 | 第30-32页 |
| ·原子力显微镜 | 第32-34页 |
| §1.2 基于细胞的电化学传感器 | 第34-41页 |
| ·细胞的固定化方法 | 第35-37页 |
| ·细胞在新型生物纳米材料上的固定技术 | 第37-38页 |
| ·基于细胞电化学行为的传感器 | 第38-39页 |
| ·基于细胞功能的电化学传感器 | 第39页 |
| ·基于细胞阻抗行为的电化学传感器 | 第39-40页 |
| ·研究趋势 | 第40-41页 |
| §1.3 细胞表面聚糖 | 第41-46页 |
| ·聚糖的定义、分类、组成和结构 | 第41页 |
| ·糖基化改变与疾病的相关性 | 第41-42页 |
| ·细胞膜表面聚糖检测的难点 | 第42-43页 |
| ·细胞膜表面聚糖检测技术 | 第43-46页 |
| ·质谱 | 第43页 |
| ·基于凝集素的技术 | 第43-46页 |
| §1.4 本论文的主要研究工作 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 第二章 凝集素功能化碳纳米管用于细胞表面聚糖动态表达的无标记监测 | 第53-67页 |
| §2.1 引言 | 第53-54页 |
| §2.2 实验部分 | 第54-58页 |
| ·试剂 | 第54-55页 |
| ·细胞株和细胞培养 | 第55-56页 |
| ·仪器 | 第56页 |
| ·PDDA功能化MWCNTs的制备 | 第56页 |
| ·传感器的制备 | 第56-57页 |
| ·ConA-MWCNTs阵列的构建 | 第57页 |
| ·细胞计数 | 第57页 |
| ·单糖抑制实验 | 第57页 |
| ·流式细胞分析 | 第57-58页 |
| §2.3 结果与讨论 | 第58-64页 |
| ·ConA非共价功能化MWCNTs的表征 | 第58-59页 |
| ·基于ConA-MWCNTs的电化学细胞传感 | 第59-61页 |
| ·利用ConA-MWCNTs和细胞表面聚糖特异性结合捕获细胞 | 第61-62页 |
| ·监测细胞表面糖基表达的无标记电化学方法 | 第62-63页 |
| ·细胞表面聚糖动态表达的无标记光学分析 | 第63-64页 |
| ·基于ConA-MWCNTs分析的重现性和稳定性 | 第64页 |
| §2.4 结论 | 第64页 |
| 参考文献 | 第64-67页 |
| 第三章 电化学凝集素探针及细胞均相传感与表面糖基原位检测 | 第67-79页 |
| §3.1 引言 | 第67-68页 |
| §3.2 实验部分 | 第68-71页 |
| ·试剂 | 第68-69页 |
| ·仪器 | 第69页 |
| ·细胞培养与细胞处理 | 第69-70页 |
| ·凝集素探针(Fc-ConA)的制备 | 第70页 |
| ·基于Fc-ConA探针的电化学分析 | 第70页 |
| ·流式细胞分析 | 第70-71页 |
| §3.3 结果与讨论 | 第71-76页 |
| ·FcCOOH和ConA共价结合的表征 | 第71-72页 |
| ·Fc-ConA探针的电化学性质 | 第72-73页 |
| ·基于Fc-ConA的电化学细胞传感 | 第73-74页 |
| ·K562细胞检测 | 第74-75页 |
| ·K562细胞表面糖基定量检测方法 | 第75-76页 |
| §3.4 结论 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-79页 |
| 第四章 以氧气为内源性指示剂实时监测细胞纳米级高度变化与活性 | 第79-94页 |
| §4.1 引言 | 第79-80页 |
| §4.2 实验部分 | 第80-83页 |
| ·试剂 | 第81页 |
| ·仪器 | 第81页 |
| ·纳米铂盘电极的制备 | 第81-82页 |
| ·细胞培养和准备 | 第82-83页 |
| ·单细胞SECM恒高度成像 | 第83页 |
| ·荧光实验监测细胞凋亡 | 第83页 |
| ·MTT试验 | 第83页 |
| §4.3 结果与讨论 | 第83-91页 |
| ·纳米铂盘电极的表征 | 第84-85页 |
| ·以氧气作为指示剂的单细胞SECM成像与复合SECM信号的分离 | 第85-87页 |
| ·PBS缓冲液中单个BGC细胞高度变化的时间序列 | 第87-90页 |
| ·紫杉醇对细胞高度变化的影响 | 第90-91页 |
| §4.4 结论 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-94页 |
| 第五章 微图案化的单个贴壁细胞表面聚糖的原位电化学成像 | 第94-110页 |
| §5.1 引言 | 第94-96页 |
| §5.2 实验部分 | 第96-99页 |
| ·试剂 | 第96页 |
| ·仪器 | 第96-97页 |
| ·铂盘微电极的制备 | 第97页 |
| ·细胞培养 | 第97页 |
| ·BGC细胞的微图案化 | 第97-98页 |
| ·SECM检测步骤 | 第98-99页 |
| ·流式细胞分析 | 第99页 |
| §5.3 结果与讨论 | 第99-106页 |
| ·铂盘微电极的表征 | 第99-100页 |
| ·细胞的图案化 | 第100-101页 |
| ·细胞表面糖基与HRP标记凝集素的特异性识别 | 第101-102页 |
| ·HRP标记凝集素浓度与识别时间的优化 | 第102-103页 |
| ·优化检测条件 | 第103-104页 |
| ·单个贴壁BGC细胞表面聚糖的SECM成像 | 第104-105页 |
| ·BGC细胞表面四种类型聚糖的原位电化学成像 | 第105-106页 |
| §5.4 结论 | 第106-107页 |
| 参考文献 | 第107-110页 |
| 附录 | 第110-113页 |
| 致谢 | 第113-114页 |
