| 摘要 | 第10-11页 |
| Abstract | 第11页 |
| 第一章 前言 | 第12-34页 |
| 1.1 中央神经系统 | 第12-13页 |
| 1.2 大脑构造及主要相关作用细胞 | 第13-24页 |
| 1.2.1 大脑 | 第13-16页 |
| 1.2.2 神经元 | 第16-18页 |
| 1.2.3 神经胶质细胞 | 第18-19页 |
| 1.2.4 小胶质细胞 | 第19-24页 |
| 1.3 小胶质细胞功能及与神经元的关系 | 第24-27页 |
| 1.4 神经退行性疾病 | 第27-29页 |
| 1.4.1 神经退行性疾病介绍 | 第27页 |
| 1.4.2 阿尔兹海默病 | 第27-28页 |
| 1.4.3 帕金森病 | 第28页 |
| 1.4.4 亨廷顿病 | 第28-29页 |
| 1.4.5 肌萎缩侧索硬化(ALS) | 第29页 |
| 1.5 盐酸右美托咪定 | 第29-30页 |
| 1.6 LPS脂多糖 | 第30-34页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第34-46页 |
| 2.1 实验材料 | 第34-36页 |
| 2.1.1 细胞株 | 第34页 |
| 2.1.2 实验相关小鼠 | 第34页 |
| 2.1.3 实验相关药品与试剂 | 第34-35页 |
| 2.1.4 实验相关仪器及耗材 | 第35-36页 |
| 2.2 QPCR相关实验 | 第36-38页 |
| 2.2.1 RNA的提取 | 第36-37页 |
| 2.2.2 逆转录反应 | 第37-38页 |
| 2.2.3 荧光定量PCR | 第38页 |
| 2.3 细胞培养 | 第38-40页 |
| 2.3.1 细胞培养和相关溶液配制 | 第38-39页 |
| 2.3.2 细胞培养及传代 | 第39页 |
| 2.3.3 BV-2细胞中加入药物方式 | 第39-40页 |
| 2.4 细胞相关实验 | 第40页 |
| 2.4.1 小鼠原代小胶质细胞的提取 | 第40页 |
| 2.4.2 原代小胶质细胞培养及加药 | 第40页 |
| 2.5 蛋白实验相关实验方法 | 第40-45页 |
| 2.5.1 细胞内源蛋白样品制备 | 第40-41页 |
| 2.5.2 BCA测定样本蛋白浓度 | 第41页 |
| 2.5.3 SDS-PAGE蛋白电泳实验 | 第41-43页 |
| 2.5.4 酶联免疫吸附法(ELISA) | 第43-44页 |
| 2.5.5 MTS检测细胞活力 | 第44-45页 |
| 2.6 统计学处理 | 第45-46页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第46-56页 |
| 3.1 不同浓度的盐酸右美托咪定对BV-2细胞活力的影响 | 第46-47页 |
| 3.2 盐酸右美托咪定对被LPS刺激后的BV-2细胞炎症相关标记基因mRNA水平的影响 | 第47-49页 |
| 3.2.1 盐酸右美托咪定抑制LPS处理后BV-2细胞致炎因子mRNA的表达 | 第47-49页 |
| 3.2.2 盐酸右美托咪定促进经LPS处理后M2型BV-2标记基因mRNA的表达 | 第49页 |
| 3.3 盐酸右美托咪定对于被LPS诱导后的小鼠原代小胶质细胞M1和M2标记基因的影响 | 第49-51页 |
| 3.4 盐酸右美托咪定抑制LPS诱导的BV-2细胞中促炎细胞因子的产生 | 第51页 |
| 3.5 盐酸右美托咪定促进Arg1蛋白的表达 | 第51-52页 |
| 3.6 单独使用盐酸右美托咪定可以增加BV-2细胞M2型标记基因mRNA的表达 | 第52-53页 |
| 3.7 盐酸右美托咪定促进小胶质细胞向M2型极化可能通过Akt信号通路 | 第53-54页 |
| 3.8 盐酸右美托咪定促进小胶质细胞向M2型极化作用会被Akt抑制剂阻止 | 第54-56页 |
| 第四章 讨论与展望 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-65页 |
| 致谢 | 第65页 |
