| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 引言 | 第11-14页 |
| 第一部分 高脂可引起内皮细胞发生EndMT | 第14-34页 |
| 1 研究对象 | 第15-16页 |
| 1.1 临床标本 | 第15页 |
| 1.1.1 研究对象来源 | 第15页 |
| 1.1.2 纳入、排除标准 | 第15页 |
| 1.1.3 采集并处理标本 | 第15页 |
| 1.1.4 临床及生化资料收集 | 第15页 |
| 1.2 实验动物 | 第15页 |
| 1.3 实验细胞 | 第15-16页 |
| 2 材料与方法 | 第16-23页 |
| 2.1 实验材料 | 第16-17页 |
| 2.1.1 主要仪器和耗材 | 第16页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第16-17页 |
| 2.2 实验方法及步骤 | 第17-23页 |
| 2.2.1 溶液配制 | 第17页 |
| 2.2.2 临床血管标本包埋切片及免疫荧光共染色 | 第17-18页 |
| 2.2.3 血清生化检测 | 第18-19页 |
| 2.2.4 小鼠血浆ox-LDL检测 | 第19页 |
| 2.2.5 分离小鼠主动脉 | 第19页 |
| 2.2.6 血管油红染色 | 第19-20页 |
| 2.2.7 免疫荧光染色en face | 第20页 |
| 2.2.8 细胞培养 | 第20-21页 |
| 2.2.9 细胞总蛋白提取 | 第21-22页 |
| 2.2.10 免疫印迹试验 | 第22-23页 |
| 2.3 统计分析 | 第23页 |
| 3 实验结果 | 第23-33页 |
| 3.1 高脂导致主动脉内皮细胞发生EndMT | 第23-29页 |
| 3.1.1 高脂血症患者肠系膜动脉内皮细胞发生EndMT | 第23-26页 |
| 3.1.2 ApoE-/-小鼠主动脉内皮细胞发生EndMT | 第26-29页 |
| 3.2 ox-LDL可引起HAECs发生EndMT | 第29-33页 |
| 3.2.1 检测LDL和ox-LDL引起内皮细胞EndMT的能力 | 第30-31页 |
| 3.2.2 Ox-LDL引起EndMT的浓度梯度 | 第31-33页 |
| 4 讨论 | 第33页 |
| 5 小结 | 第33-34页 |
| 第二部分 ox-LDL引起内皮细胞EndMT的机制 | 第34-47页 |
| 1 研究对象 | 第35页 |
| 1.1 实验细胞 | 第35页 |
| 1.2 实验血管 | 第35页 |
| 2 材料与方法 | 第35-41页 |
| 2.1 实验材料 | 第35-37页 |
| 2.1.1 主要仪器和耗材 | 第35页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第35-37页 |
| 2.2 实验方法 | 第37-40页 |
| 2.2.1 溶液配制 | 第37页 |
| 2.2.2 细胞培养 | 第37页 |
| 2.2.3 细胞干预 | 第37-38页 |
| 2.2.4 细胞总蛋白提取 | 第38页 |
| 2.2.5 免疫印迹试验 | 第38-39页 |
| 2.2.6 血管舒张功能检测 | 第39-40页 |
| 2.3 统计分析 | 第40-41页 |
| 3 实验结果 | 第41-46页 |
| 3.1 ox-LDL通过激活TGFβ通路引起内皮细胞EndMT | 第41-42页 |
| 3.2 Ox-LDL通过抑制e NOS/NO引起内皮细胞EndMT | 第42-45页 |
| 3.2.1 Ox-LDL可以抑制e NOS的表达 | 第42-43页 |
| 3.2.2 aopE-/-小鼠主动脉舒张功能受损 | 第43-44页 |
| 3.2.3 e NOS可通过释放NO抑制内皮细胞发生EndMT | 第44-45页 |
| 3.3 ox-LDL引起内皮细胞EndMT通路图 | 第45-46页 |
| 4 讨论 | 第46页 |
| 5 小结 | 第46-47页 |
| 全文总结 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-50页 |
| 附录A 中英文缩略词表 | 第50-52页 |
| 附录B 综述 | 第52-59页 |
| 参考文献 | 第56-59页 |
| 附录C 在学研究成果 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60页 |
