| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第10-11页 |
| 第1章 引言 | 第11-14页 |
| 第2章 N,N,N-三甲基-N-辛基壳聚糖的合成与表征 | 第14-20页 |
| 引言 | 第14页 |
| 2.1 实验材料及仪器 | 第14-15页 |
| 2.1.1 主要实验材料 | 第14页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第14-15页 |
| 2.2 N,N,N-三甲基-N-辛基壳聚糖的合成 | 第15-16页 |
| 2.2.1 N,N,N-三甲基-N-辛基壳聚糖的合成 | 第15-16页 |
| 2.2.2 产物的表征 | 第16页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第16-19页 |
| 2.3.1 产物的红外光谱分析 | 第16-18页 |
| 2.3.2 产物的元素分析 | 第18-19页 |
| 2.4 本章小结 | 第19-20页 |
| 第3章 固体脂质纳米粒的制备 | 第20-26页 |
| 3.1 仪器和试药 | 第20-21页 |
| 3.1.1 仪器 | 第20页 |
| 3.1.2 试药 | 第20-21页 |
| 3.2 空白SLN的制备 | 第21-24页 |
| 3.2.1 高速剪切-超声法制备空白SLN | 第21页 |
| 3.2.2 单因素考察质量评价方法 | 第21-22页 |
| 3.2.3 制备工艺的单因素考察 | 第22-24页 |
| 3.3 讨论与小结 | 第24-26页 |
| 第4章 环孢素A含量及包封率测定方法的建立 | 第26-33页 |
| 4.1 仪器和试药 | 第26-27页 |
| 4.1.1 仪器 | 第26页 |
| 4.1.2 试药 | 第26-27页 |
| 4.2 方法与结果 | 第27-31页 |
| 4.2.1 环孢素A(CyA)体外分析方法的建立 | 第27页 |
| 4.2.2 色谱条件 | 第27-28页 |
| 4.2.3 方法专属性 | 第28页 |
| 4.2.4 标准曲线的制备 | 第28-29页 |
| 4.2.5 回收率试验 | 第29-30页 |
| 4.2.6 精密度试验 | 第30页 |
| 4.2.7 最低检测限 | 第30-31页 |
| 4.3 环孢素A-TMACS-SLN包封率的测定 | 第31-32页 |
| 4.3.1 超速离心法 | 第31页 |
| 4.3.2 超速离心转速及时间的选择 | 第31页 |
| 4.3.3 凝聚离心法 | 第31页 |
| 4.3.4 絮凝剂用量的确定 | 第31-32页 |
| 4.4 讨论与小结 | 第32-33页 |
| 第5章 固体脂质纳米粒理化性质的研究 | 第33-50页 |
| 5.1 仪器和试药 | 第33页 |
| 5.1.1 仪器 | 第33页 |
| 5.1.2 试药 | 第33页 |
| 5.2 空白SLN的理化性质 | 第33-43页 |
| 5.2.1 透射电镜法观察SLN形态 | 第34页 |
| 5.2.2 粒径大小 | 第34页 |
| 5.2.3 DSC测定 | 第34-36页 |
| 5.2.4 X-衍射 | 第36-37页 |
| 5.2.5 FT-IR | 第37-40页 |
| 5.2.6 体外生物粘附性测定 | 第40-42页 |
| 5.2.7 乳化活性指数的测定 | 第42-43页 |
| 5.3 CyA-TMACS-SLN的理化性质 | 第43-48页 |
| 5.3.1 透射电镜 | 第43页 |
| 5.3.2 粒径 | 第43页 |
| 5.3.3 包封率的测定 | 第43-44页 |
| 5.3.4 DSC | 第44页 |
| 5.3.5 X-衍射 | 第44-45页 |
| 5.3.6 红外 | 第45-47页 |
| 5.3.7 体外释放 | 第47-48页 |
| 5.4 小结 | 第48-50页 |
| 第6章 固体脂质纳米粒的物理稳定性研究 | 第50-58页 |
| 6.1 仪器和试药 | 第50-51页 |
| 6.1.1 仪器 | 第50页 |
| 6.1.2 试药 | 第50-51页 |
| 6.2 稳定性研究 | 第51-56页 |
| 6.2.1 空白SLN的粒径及分布 | 第51页 |
| 6.2.2 空白SLN的红外 | 第51-52页 |
| 6.2.3 空白SLN的DSC | 第52-54页 |
| 6.2.4 空白SLN的X-衍射 | 第54-55页 |
| 6.2.5 CyA-TMACS-SLN的长期稳定性 | 第55-56页 |
| 6.3 小结 | 第56-58页 |
| 全文总结 | 第58-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-65页 |
