| 摘要 | 第11-14页 |
| ABSTRACT | 第14-18页 |
| 符号及缩略语 | 第19-20页 |
| 文献综述 | 第20-51页 |
| 第一章 淫羊藿多糖的研究进展 | 第21-30页 |
| 1 淫羊藿 | 第21页 |
| 2 淫羊藿多糖的提取和纯化 | 第21-22页 |
| 3 淫羊藿多糖的糖含量测定 | 第22页 |
| 4 淫羊藿多糖的化学组成 | 第22-23页 |
| 5 淫羊藿多糖的药理活性 | 第23-26页 |
| 5.1 对免疫细胞的影响 | 第23-24页 |
| 5.2 对细胞因子的作用 | 第24页 |
| 5.3 对免疫器官的影响 | 第24页 |
| 5.4 对造血系统的影响 | 第24页 |
| 5.5 对内分泌系统的影响 | 第24-25页 |
| 5.6 促进肝脏干细胞增殖的作用 | 第25页 |
| 5.7 血小板凝集作用 | 第25页 |
| 5.8 抗衰老作用 | 第25-26页 |
| 5.9 抗病毒作用 | 第26页 |
| 参考文献 | 第26-30页 |
| 第二章 板蓝根多糖研究进展 | 第30-39页 |
| 1 板蓝根 | 第30页 |
| 2 板蓝根多糖的提取 | 第30-31页 |
| 3 板蓝根多糖的纯化 | 第31页 |
| 4 板蓝根多糖的化学组成 | 第31-32页 |
| 5 板蓝根多糖的药理活性 | 第32-34页 |
| 5.1 抗病毒作用 | 第32页 |
| 5.2 免疫调节的作用 | 第32-33页 |
| 5.3 板蓝根多糖抗菌作用 | 第33-34页 |
| 5.4 抗氧化作用 | 第34页 |
| 5.5 保护肝脏作用 | 第34页 |
| 5.6 抗炎作用 | 第34页 |
| 参考文献 | 第34-39页 |
| 第三章 硒多糖研究进展 | 第39-51页 |
| 1 硒的发现和应用 | 第39-40页 |
| 1.1 硒的存在形式 | 第39-40页 |
| 1.2 硒的生化功能 | 第40页 |
| 2 多糖的化学修饰 | 第40页 |
| 3 硒多糖的来源 | 第40-42页 |
| 3.1 天然植物硒多糖 | 第41页 |
| 3.2 微生物富集硒多糖 | 第41页 |
| 3.3 人工合成硒多糖 | 第41-42页 |
| 4 硒多糖的结构 | 第42页 |
| 4.1 天然硒多糖的结构 | 第42页 |
| 4.2 人工合成硒多糖的结构 | 第42页 |
| 5 硒多糖的生物活性 | 第42-45页 |
| 5.1 免疫调节作用 | 第42-43页 |
| 5.2 抗氧化作用 | 第43-44页 |
| 5.3 抗病毒作用 | 第44页 |
| 5.4 降血糖、降血脂作用 | 第44-45页 |
| 5.5 抗金属中毒的作用 | 第45页 |
| 5.6 抗肿瘤作用 | 第45页 |
| 6 本研究的选题和意义 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-51页 |
| 试验研究 | 第51-123页 |
| 第四章 硒化淫羊藿多糖和硒化板蓝根多糖的制备 | 第53-65页 |
| 1 材料与方法 | 第53-56页 |
| 1.1 试验药物 | 第53-54页 |
| 1.2 主要试剂 | 第54页 |
| 1.3 主要仪器 | 第54页 |
| 1.4 多糖的提取和纯化 | 第54-55页 |
| 1.5 多糖的硒化修饰 | 第55页 |
| 1.6 多糖的鉴定 | 第55-56页 |
| 2 结果 | 第56-60页 |
| 2.1 淫羊藿多糖和板蓝根多糖的提取和纯化 | 第56-58页 |
| 2.2 硒化多糖的产量、硒含量和糖含量 | 第58-59页 |
| 2.3 硒化多糖的红外光谱 | 第59-60页 |
| 3 讨论 | 第60-62页 |
| 3.1 多糖的提取和纯化 | 第60-61页 |
| 3.2 多糖的硒化修饰 | 第61页 |
| 3.3 硒化多糖的鉴别 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-65页 |
| 第五章 硒化淫羊藿多糖和硒化板蓝根多糖体外增强免疫活性的比较 | 第65-79页 |
| 1 材料与方法 | 第66-68页 |
| 1.1 多糖准备 | 第66页 |
| 1.2 主要试剂 | 第66-67页 |
| 1.3 主要仪器 | 第67页 |
| 1.4 硒化多糖对淋巴细胞安全浓度的测定 | 第67页 |
| 1.5 淋巴细胞增殖测定 | 第67-68页 |
| 1.6 数据分析 | 第68页 |
| 2 结果 | 第68-75页 |
| 2.1 硒化淫羊蕾多糖对淋巴细胞的安全浓度 | 第68-69页 |
| 2.2 硒化板蓝根多糖对淋巴细胞的安全浓度 | 第69-70页 |
| 2.3 硒化淫羊藿多糖单独刺激时淋巴细胞增殖的变化 | 第70-72页 |
| 2.4 硒化淫羊藿多糖协同PHA刺激时淋巴细胞增殖的变化 | 第72页 |
| 2.5 硒化板蓝根多糖单独刺激时淋巴细胞增殖的变化 | 第72-74页 |
| 2.6 硒化板蓝根多糖协同PHA刺激时淋巴细胞增殖的变化 | 第74-75页 |
| 3 讨论 | 第75-76页 |
| 3.1 硒化多糖对淋巴细胞增殖的影响 | 第75-76页 |
| 3.2 硒化多糖对淋巴细胞增殖率的影响 | 第76页 |
| 参考文献 | 第76-79页 |
| 第六章 硒化淫羊藿多糖和硒化板蓝根多糖体外抗氧化活性的比较 | 第79-89页 |
| 1 材料与方法 | 第80-81页 |
| 1.1 多糖准备 | 第80页 |
| 1.2 主要试剂 | 第80页 |
| 1.3 主要仪器 | 第80-81页 |
| 1.4 DPPH自由基清除试验 | 第81页 |
| 1.5 清除羟自由基能力的测定 | 第81页 |
| 1.6 ABTS自由基清除试验 | 第81页 |
| 1.7 数据分析 | 第81页 |
| 2 结果 | 第81-85页 |
| 2.1 硒化淫羊藿多糖对DPPH自由基的清除能力 | 第81-82页 |
| 2.2 硒化板蓝根多糖对DPPH自由基的清除能力 | 第82-83页 |
| 2.3 硒化淫羊藿多糖对羟自由基的清除能力 | 第83页 |
| 2.4 硒化板蓝根多糖对羟自由基的清除能力 | 第83-84页 |
| 2.5 硒化淫羊藿多糖对ABTS自由基的清除能力 | 第84页 |
| 2.6 硒化板蓝根多糖对ABTS自由基的清除能力 | 第84-85页 |
| 3 讨论 | 第85-86页 |
| 3.1 硒化多糖对清除DPPH自由基的影响 | 第85-86页 |
| 3.2 硒化多糖对清除羟自由基能力的影响 | 第86页 |
| 3.3 ABTS自由基清除试验 | 第86页 |
| 参考文献 | 第86-89页 |
| 第七章 硒化淫羊藿多糖和硒化板蓝根多糖体内增强免疫活性的比较 | 第89-103页 |
| 1 材料与方法 | 第89-93页 |
| 1.1 多糖准备 | 第90页 |
| 1.2 疫苗与试剂 | 第90-91页 |
| 1.3 主要仪器 | 第91页 |
| 1.4 动物分组与处理 | 第91页 |
| 1.5 血清抗体效价的测定 | 第91-92页 |
| 1.6 淋巴细胞增殖测定 | 第92页 |
| 1.7 免疫器官指数测定 | 第92-93页 |
| 1.8 血清IL-2、IL-6和IFN-γ含量的测定 | 第93页 |
| 1.9 数据分析 | 第93页 |
| 2 结果 | 第93-97页 |
| 2.1 血清抗体效价的变化 | 第93页 |
| 2.2 淋巴细胞增殖的变化 | 第93-94页 |
| 2.3 免疫器官指数的变化 | 第94-95页 |
| 2.4 IL-2含量的变化 | 第95-96页 |
| 2.5 IL-6含量的变化 | 第96页 |
| 2.6 IFN-γ含量的变化 | 第96-97页 |
| 3 讨论 | 第97-99页 |
| 3.1 两种硒化多糖对体液免疫的影响 | 第97页 |
| 3.2 两种硒化多糖对细胞免疫的影响 | 第97-98页 |
| 3.3 两种硒化多糖对免疫器官发育的影响 | 第98页 |
| 3.4 两种硒化多糖对血清IL-2、IL-6和IFN-γ含量的影响 | 第98-99页 |
| 参考文献 | 第99-103页 |
| 第八章 硒化淫羊藿多糖和硒化板蓝根多糖体内抗氧化活性的比较 | 第103-113页 |
| 1 材料与方法 | 第103-104页 |
| 1.1 多糖准备 | 第103-104页 |
| 1.2 新城疫疫苗 | 第104页 |
| 1.3 主要试剂与仪器 | 第104页 |
| 1.4 试验动物及分组处理 | 第104页 |
| 1.5 数据分析 | 第104页 |
| 2 结果 | 第104-108页 |
| 2.1 血清CAT活性的变化 | 第104-105页 |
| 2.2 血清T-SOD活性的变化 | 第105-106页 |
| 2.3 血清GSH-Px活性的变化 | 第106-107页 |
| 2.4 各组血清MDA含量的变化 | 第107-108页 |
| 3 讨论 | 第108-111页 |
| 3.1 两种硒化多糖对血清CAT活性的影响 | 第108-109页 |
| 3.2 两种硒化多糖对T-SOD活性的影响 | 第109页 |
| 3.3 两种硒化多糖对GSH-Px活性的影响 | 第109-110页 |
| 3.4 两种硒化多糖对血清MDA含量的影响 | 第110-111页 |
| 参考文献 | 第111-113页 |
| 第九章 硒化淫羊藿多糖对IL-2、IL-6和IFN-γ mRNA表达的影响 | 第113-123页 |
| 1 材料与方法 | 第113-116页 |
| 1.1 试验药物 | 第113-114页 |
| 1.2 主要试剂 | 第114页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第114页 |
| 1.4 鸡外周血淋巴细胞的分离及培养 | 第114页 |
| 1.5 鸡外周血淋巴细胞总RNA的提取 | 第114-115页 |
| 1.6 反转录(RT) | 第115页 |
| 1.7 引物设计 | 第115页 |
| 1.8 Real-time荧光PCR测定 | 第115-116页 |
| 1.9 数据分析 | 第116页 |
| 2 结果 | 第116-119页 |
| 2.1 反应条件的优化 | 第116页 |
| 2.2 IL-2、IL-6和IFN-γmRNA表达量的变化 | 第116-119页 |
| 3 讨论 | 第119-121页 |
| 3.1 实时荧光定量PCR在本研究的应用 | 第119-120页 |
| 3.2 硒化多糖对IL-2、IL-6和IFN-γ mRNA转录的影响 | 第120-121页 |
| 3.3 硒化多糖对剂量IL-2、IL-6和IFN-γmRNA转录的影响 | 第121页 |
| 参考文献 | 第121-123页 |
| 全文总结 | 第123-125页 |
| 论文创新点 | 第125-127页 |
| 致谢 | 第127-129页 |
| 攻读博士学位期间发表和完成的学术论文 | 第129页 |
