| 致谢 | 第5-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 第一部分 文献综述 | 第13-25页 |
| 1 稻曲病的研究进展 | 第13-25页 |
| 1.1 稻曲病在我国和世界各地的发生发展 | 第13-14页 |
| 1.2 稻曲病的症状及危害 | 第14-15页 |
| 1.3 稻曲病的生物学研究 | 第15-17页 |
| 1.3.1 病原菌分类地位 | 第15页 |
| 1.3.2 稻曲病菌的培养特性 | 第15-16页 |
| 1.3.3 稻曲病的发病因素 | 第16-17页 |
| 1.4 稻曲病菌产孢情况 | 第17-19页 |
| 1.4.1 厚垣孢子 | 第17-18页 |
| 1.4.2 薄壁分生孢子 | 第18页 |
| 1.4.3 子囊孢子 | 第18-19页 |
| 1.5 稻曲病的侵染循环 | 第19-21页 |
| 1.5.1 稻曲病的越冬及初侵染源 | 第19页 |
| 1.5.2 稻曲病菌的侵染时期 | 第19-20页 |
| 1.5.3 稻曲病菌的侵染机制 | 第20-21页 |
| 1.6 稻曲病菌的中间寄主 | 第21页 |
| 1.7 稻曲病菌的菌核 | 第21-22页 |
| 1.7.1 菌核的形成 | 第21-22页 |
| 1.7.2 菌核的萌发 | 第22页 |
| 1.8 稻曲病的防治 | 第22-25页 |
| 1.8.1 选用抗病品种 | 第22-23页 |
| 1.8.2 田间的栽培管理 | 第23页 |
| 1.8.3 化学防治 | 第23-24页 |
| 1.8.4 生物防治 | 第24-25页 |
| 第二部分 实验部分 | 第25-55页 |
| 2 低温对稻曲病菌菌核形成的影响 | 第25-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第25页 |
| 2.1.1 供试菌株 | 第25页 |
| 2.1.2 供试植物 | 第25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-27页 |
| 2.2.1 稻曲病菌的人工接种 | 第25-26页 |
| 2.2.2 人工接种水稻的低温处理 | 第26页 |
| 2.2.3 田间发病水稻的低温处理 | 第26-27页 |
| 2.2.4 不同水稻种植期对菌核形成的影响 | 第27页 |
| 2.3 实验结果 | 第27-31页 |
| 2.3.1 低温对人工接种水稻菌核产生的影响 | 第27-29页 |
| 2.3.2 低温对田间自然发病水稻菌核形成的影响 | 第29-30页 |
| 2.3.3 不同阶段稻曲球的解剖学分析 | 第30页 |
| 2.3.4 水稻种植期对菌核形成的影响 | 第30-31页 |
| 2.4 讨论 | 第31-32页 |
| 2.5 结论 | 第32页 |
| 2.6 致谢 | 第32-33页 |
| 3 稻曲病菌有性生殖基因的筛选与功能研究 | 第33-55页 |
| 3.1 实验材料 | 第35-37页 |
| 3.1.1 供试菌株 | 第35页 |
| 3.1.2 供试试剂 | 第35页 |
| 3.1.3 供试抗生素 | 第35-36页 |
| 3.1.4 供试载体 | 第36页 |
| 3.1.5 培养基及配方 | 第36-37页 |
| 3.2 实验方法 | 第37-45页 |
| 3.2.1 常规PCR反应 | 第37-39页 |
| 3.2.2 CTAB法大量抽提稻曲病菌基因组DNA | 第39页 |
| 3.2.3 潜在有性生殖相关基因的筛选 | 第39-41页 |
| 3.2.4 基因敲除载体的构建 | 第41-43页 |
| 3.2.5 原生质体转化 | 第43-44页 |
| 3.2.6 转化子检测 | 第44-45页 |
| 3.2.7 易位插入检测 | 第45页 |
| 3.3 实验结果 | 第45-53页 |
| 3.3.1 转录组数据分析 | 第45-48页 |
| 3.3.2 潜在有性生殖相关基因的筛选 | 第48页 |
| 3.3.3 原生质体制备 | 第48-49页 |
| 3.3.4 转化子检测 | 第49-50页 |
| 3.3.5 易位插入检测 | 第50-53页 |
| 3.4 讨论 | 第53-54页 |
| 3.5 致谢 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-67页 |
| 附录Ⅰ | 第67-68页 |