| 致谢 | 第6-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 缩略词表 | 第12-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-29页 |
| 1.1 引言 | 第17-18页 |
| 1.2 乙烯与果实软化 | 第18-19页 |
| 1.2.1 乙烯的生物合成和信号转导 | 第18页 |
| 1.2.2 乙烯促进果实成熟与软化 | 第18-19页 |
| 1.3 细胞壁与果实质地软化 | 第19-24页 |
| 1.3.1 细胞壁结构的变化 | 第19-20页 |
| 1.3.2 细胞壁多糖物质的降解 | 第20-22页 |
| 1.3.2.1 果胶物质 | 第20-22页 |
| 1.3.2.1 半纤维素和纤维素 | 第22页 |
| 1.3.3 果胶降解相关酶 | 第22-24页 |
| 1.3.3.1 PG | 第22-23页 |
| 1.3.3.2 β-Gal | 第23-24页 |
| 1.4 转录因子与果实成熟软化 | 第24页 |
| 1.5 猕猴桃软化机理研究进展 | 第24-27页 |
| 1.6 本实验的主要目的和研究内容 | 第27-29页 |
| 第二章 材料与方法 | 第29-37页 |
| 2.1 实验材料与处理方法 | 第29页 |
| 2.2 果实细胞壁物质(CWM)的提取、分离及含量检测 | 第29-30页 |
| 2.3 果实细胞壁酶活性测定 | 第30页 |
| 2.4 PG和β-Gal编码基因克隆与表达分析 | 第30-34页 |
| 2.5 酵母体系 | 第34-35页 |
| 2.5.1 酵母单杂交及筛库 | 第34-35页 |
| 2.5.1.1 载体构建 | 第34页 |
| 2.5.1.2 酵母筛库实验 | 第34-35页 |
| 2.5.2 酵母单一验证体系 | 第35页 |
| 2.6 烟草双荧光素酶体系(转录调控效应分析) | 第35-36页 |
| 2.7 数据统计分析与图表制作 | 第36-37页 |
| 第三章 猕猴桃采后果实细胞壁降解特性及果胶降解酶活性分析 | 第37-43页 |
| 3.1 ‘HWD’和‘HY’猕猴桃采后细胞壁物质及不同组分分析 | 第37-39页 |
| 3.1.1 ‘HWD’和‘HY’果实细胞壁物质分析 | 第37页 |
| 3.1.2 ‘HWD’和‘HY’果实的果胶分析 | 第37-39页 |
| 3.1.3 ‘HWD’和‘HY’果实半纤维素和纤维素分析 | 第39页 |
| 3.2 ‘HWD’和‘HY’果实果胶降解相关的PG和β-Gal活性分析 | 第39-41页 |
| 3.2.1 ‘HWD’和‘HY’果实PG酶活性分析 | 第39-40页 |
| 3.2.2 ‘HWD’和‘HY’果实β-Gal酶活性分析 | 第40-41页 |
| 3.3 分析 | 第41-43页 |
| 第四章 猕猴桃果实PG和β-Gal编码基因克隆和表达分析 | 第43-52页 |
| 4.1 猕猴桃PG和Gal基因的克隆和分析 | 第43-46页 |
| 4.1.1 猕猴桃AdPG基因的克隆和分析 | 第43页 |
| 4.1.2 猕猴桃AdGal基因的克隆和分析 | 第43-46页 |
| 4.2 猕猴桃PG和Gal基因表达和分析 | 第46-50页 |
| 4.2.1 AdPG基因表达分析 | 第46-48页 |
| 4.2.2 AdGal基因表达分析 | 第48-50页 |
| 4.3 PG和β-Gal基因表达与酶活性的相关性分析 | 第50-51页 |
| 4.4 分析 | 第51-52页 |
| 第五章 初步探索AdPG1启动子的转录调控 | 第52-55页 |
| 5.1 AdPG1启动子的筛库分析 | 第52-53页 |
| 5.2 AdBPC对AdPG1启动子的转录调控分析 | 第53-54页 |
| 5.3 分析 | 第54-55页 |
| 第六章 小结和展望 | 第55-56页 |
| 6.1 小结 | 第55页 |
| 6.2 展望 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-73页 |
| 作者学习经历及在学期间所取得的科研成果 | 第73页 |
