中文摘要 | 第2-4页 |
Abstract | 第4-6页 |
符号说明 | 第8-10页 |
前言 | 第10-15页 |
第一部分 miR-16对小鼠腹腔巨噬细胞极化的调节作用 | 第15-29页 |
1 材料和试剂 | 第15-17页 |
1.1 研究对象 | 第15页 |
1.2 主要试剂 | 第15页 |
1.3 主要仪器 | 第15-16页 |
1.4 主要自配试剂 | 第16-17页 |
2 方法和步骤 | 第17-21页 |
2.1 小鼠腹腔原代巨噬细胞的获得及鉴定 | 第17页 |
2.2 M1型巨噬细胞和M2型巨噬细胞的诱导及鉴定 | 第17-19页 |
2.3 慢病毒介导的miR-16感染小鼠腹腔原代巨噬细胞 | 第19-20页 |
2.4 慢病毒介导的miR-16感染IL-4诱导的M2型巨噬细胞 | 第20-21页 |
3 结果 | 第21-29页 |
3.1 成功获得小鼠原代腹腔巨噬细胞 | 第21页 |
3.2 成功获得M1型和M2型巨噬细胞 | 第21-24页 |
3.3 慢病毒介导的miR-16成功感染小鼠腹腔原代巨噬细胞 | 第24-26页 |
3.4 慢病毒介导的miR-16成功感染IL-4诱导的M2型巨噬细胞 | 第26-29页 |
第二部分 miR-16调节小鼠腹腔巨噬细胞极化对T细胞功能的影响及其可能机制 | 第29-41页 |
1 材料和试剂 | 第29-32页 |
1.1 研究对象 | 第29页 |
1.2 主要试剂 | 第29-30页 |
1.3 主要仪器 | 第30-31页 |
1.4 主要自配试剂 | 第31-32页 |
2 方法和步骤 | 第32-38页 |
2.1 M2型巨噬细胞和CD4~+T细胞共培养 | 第32-33页 |
2.2 T细胞功能的检测 | 第33页 |
2.3 生物学信息的预测 | 第33-34页 |
2.4 Western Blotting检测蛋白PD-L1的表达水平 | 第34-38页 |
3 结果 | 第38-41页 |
3.1 M2型巨噬细胞过表达miR-16后,促进T细胞的活化 | 第38-39页 |
3.2 miR-16与PD-L1mRNA 3'-UTR区互补结合 | 第39-40页 |
3.3 M2型巨噬细胞过表达miR-16后,PD-L1蛋白表达下降 | 第40页 |
3.4 统计分析 | 第40-41页 |
讨论 | 第41-44页 |
结论 | 第44-45页 |
参考文献 | 第45-49页 |
综述 | 第49-60页 |
参考文献 | 第54-60页 |
致谢 | 第60-61页 |
攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第61-62页 |