| 致谢 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 1 文献综述 | 第15-26页 |
| 1.1 去饱和酶及其生物学功能 | 第15-23页 |
| 1.1.1 去饱和酶基因亚家族 | 第15-16页 |
| 1.1.2 昆虫去饱和酶分类 | 第16-20页 |
| 1.1.3 昆虫去饱和酶生物学功能 | 第20-23页 |
| 1.2 植食性昆虫唾液在调控植物防御反应中的作用 | 第23-25页 |
| 1.3 研究目的与意义 | 第25-26页 |
| 2 褐飞虱去饱和酶基因分析及生物学功能研究 | 第26-68页 |
| 2.1 材料与方法 | 第26-37页 |
| 2.1.1 供试水稻 | 第26-27页 |
| 2.1.2 供试昆虫 | 第27页 |
| 2.1.3 褐飞虱去饱和酶基因的搜索及克隆 | 第27-29页 |
| 2.1.4 褐飞虱去饱和酶基因氨基酸序列及系统进化分析 | 第29页 |
| 2.1.5 褐飞虱去饱和酶基因表达模式的荧光定量PCR分析 | 第29-30页 |
| 2.1.6 褐飞虱去饱和酶基因RNA干扰 | 第30-32页 |
| 2.1.7 褐飞虱生物学参数测定 | 第32-33页 |
| 2.1.8 蛋白质含量检测 | 第33页 |
| 2.1.9 甘油三酯(Triglyceride)含量检测 | 第33-34页 |
| 2.1.10 水稻信号分子含量测定 | 第34页 |
| 2.1.11 数据处理 | 第34-37页 |
| 2.2 结果与分析 | 第37-62页 |
| 2.2.1 褐飞虱去饱和酶基因克隆与序列分析 | 第37-44页 |
| 2.2.2 褐飞虱去饱和酶基因的组织特异性定量分析 | 第44-46页 |
| 2.2.3 褐飞虱去饱和酶基因不同发育时期表达模式分析 | 第46-48页 |
| 2.2.4 褐飞虱去饱和酶基因RNAi效果检测及存活率测定 | 第48-51页 |
| 2.2.5 干扰Nldesat10阻碍褐飞虱卵巢发育 | 第51-55页 |
| 2.2.6 干扰Nldesat10下调TOR基因和载脂蛋白基因表达 | 第55-57页 |
| 2.2.7 干扰Nldesat10降低褐飞虱蛋白质及甘油三酯含量 | 第57-58页 |
| 2.2.8 干扰Nldesat10降低褐飞虱取食量及体重 | 第58-59页 |
| 2.2.9 干扰褐飞虱去饱和酶Nldesat10诱导水稻SA积累 | 第59-62页 |
| 2.3 讨论 | 第62-68页 |
| 3 唾液蛋白NlSEF1在褐飞虱调控水稻防御中的作用 | 第68-84页 |
| 3.1 材料与方法 | 第70-73页 |
| 3.1.1 供试水稻 | 第70页 |
| 3.1.2 供试昆虫 | 第70页 |
| 3.1.3 NlSEF1基因克隆及蛋白序列分析 | 第70页 |
| 3.1.4 NlSEF1基因干扰 | 第70-71页 |
| 3.1.5 NlSEF1蛋白原核表达 | 第71页 |
| 3.1.6 NlSEF1蛋白钙离子结合功能验证 | 第71-72页 |
| 3.1.7 水稻胞内钙离子检测 | 第72页 |
| 3.1.8 水稻信号分子含量测定 | 第72-73页 |
| 3.1.9 数据分析 | 第73页 |
| 3.2 结果与分析 | 第73-82页 |
| 3.2.1 褐飞虱唾液蛋白NlSEF1氨基酸序列分析 | 第73-74页 |
| 3.2.2 褐飞虱唾液蛋白NlSEF1基因RNAi沉默效率及表型 | 第74-76页 |
| 3.2.3 褐飞虱唾液蛋白NlSEF1具有钙离子结合能力 | 第76-77页 |
| 3.2.4 褐飞虱唾液蛋白NlSEF1调控水稻胞质钙离子水平下降 | 第77-79页 |
| 3.2.5 褐飞虱唾液蛋白NlSEF1抑制水稻过氧化氢积累 | 第79-82页 |
| 3.3 讨论 | 第82-84页 |
| 4 全文总结与展望 | 第84-87页 |
| 4.1 全文总结 | 第84-85页 |
| 4.2 创新之处 | 第85-86页 |
| 4.3 下一步研究计划 | 第86-87页 |
| References | 第87-97页 |
