摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
中英文对照表 | 第8-10页 |
第一章 文献综述 | 第10-21页 |
1.1 研究背景 | 第10-17页 |
1.1.1 杆状病毒概述 | 第10页 |
1.1.2 杆状病毒分类 | 第10-11页 |
1.1.3 杆状病毒的病毒体形态 | 第11-12页 |
1.1.4 杆状病毒的生活史 | 第12-13页 |
1.1.5 杆状病毒的基因表达 | 第13-14页 |
1.1.6 杆状病毒的基因组 | 第14-15页 |
1.1.7 杆状病毒应用 | 第15-17页 |
1.2 蛋白激酶(PK)的简介 | 第17-20页 |
1.2.1 病毒的相关蛋白激酶 | 第17-18页 |
1.2.2 杆状病毒编码的蛋白激酶PK-1 | 第18-19页 |
1.2.3 杆状病毒蛋白质磷酸化及多角体组装 | 第19-20页 |
1.3 本实验的目的与意义 | 第20-21页 |
第二章 polyhedrin的磷酸化作用对多角体形成的影响 | 第21-39页 |
2.1 实验材料 | 第21-25页 |
2.1.1 实验仪器 | 第21页 |
2.1.2 菌种和质粒 | 第21页 |
2.1.3 载体 | 第21-22页 |
2.1.4 细胞系及培养基 | 第22页 |
2.1.5 酶、抗生素及相关试剂 | 第22-23页 |
2.1.6 相关试剂的配制 | 第23-24页 |
2.1.7 SDS-PAGE缓冲液及相关试剂的配制 | 第24页 |
2.1.8 引物 | 第24-25页 |
2.2 实验方法 | 第25-33页 |
2.2.1 聚合酶链式反应(PCR) | 第25-26页 |
2.2.2 多功能DNA纯化回收试剂盒回收PCR产物和酶切产物 | 第26-27页 |
2.2.3 PCR回收产物酶连反应 | 第27页 |
2.2.4 CaCl_2法制备大肠杆菌的感受态细胞 | 第27-28页 |
2.2.5 感受态细胞DH5α的转化 | 第28页 |
2.2.6 大肠杆菌中一般质粒的提取 | 第28-29页 |
2.2.7 酶切反应 | 第29-30页 |
2.2.8 目的基因酶连载体 | 第30页 |
2.2.9 质粒转化DH1013 | 第30-31页 |
2.2.10 病毒质粒AcBacmid提取 | 第31页 |
2.2.11 细胞的转染感染 | 第31-33页 |
2.3 实验结果与分析 | 第33-38页 |
2.3.1 各目的片段的克隆 | 第33-34页 |
2.3.2 重组质粒的构建 | 第34-35页 |
2.3.3 构建重组Bacmid | 第35-37页 |
2.3.4 转染感染 | 第37-38页 |
2.3.5 SDS-PAGE | 第38页 |
2.4 结论 | 第38-39页 |
第三章 含HearNPV pk-1的AcMNPV重组Bacmid的构建 | 第39-43页 |
3.1 实验材料 | 第39-40页 |
3.1.1 实验仪器 | 第39页 |
3.1.2 菌种和质粒 | 第39页 |
3.1.3 载体 | 第39-40页 |
3.1.4 细胞系及培养基 | 第40页 |
3.1.5 酶、抗生素及相关试剂 | 第40页 |
3.1.6 引物 | 第40页 |
3.2 实验方法 | 第40页 |
3.3 实验结果与分析 | 第40-43页 |
3.3.1 HearNPV pk-1基因的克隆和重组载体的构建 | 第40-42页 |
3.3.2 重组Bacmid的构建 | 第42-43页 |
第四章 总结与讨论 | 第43-45页 |
参考文献 | 第45-51页 |
致谢 | 第51-52页 |
攻读硕士学位期间学术论文发表情况 | 第52-53页 |