摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
主要符号缩写对照表 | 第10-11页 |
第一章 绪论 | 第11-18页 |
1.1 化学品毒性评价的背景与意义 | 第11-12页 |
1.2 细胞毒性检测传统方法 | 第12-14页 |
1.2.1 四甲基偶氮唑盐(MTT)比色法 | 第12-13页 |
1.2.2 染色计数法 | 第13页 |
1.2.3 乳酸脱氢酶(LDH)法 | 第13页 |
1.2.4 流式细胞仪法 | 第13页 |
1.2.5 硫化罗丹明(SRB)法 | 第13-14页 |
1.2.6 中性红(NR)染色法 | 第14页 |
1.3 电化学生物传感器 | 第14-16页 |
1.3.1 电化学酶传感器 | 第15页 |
1.3.2 电化学免疫传感器 | 第15页 |
1.3.3 细胞传感器 | 第15-16页 |
1.3.4 微生物传感器 | 第16页 |
1.4 细胞多参数传感器用于化学品毒性研究现状 | 第16页 |
1.5 微流控与细胞多参数集成芯片 | 第16-17页 |
1.6 本课题的设计 | 第17-18页 |
第二章 化学品间接毒性监测平台理论及设计 | 第18-28页 |
2.1 生物反应器 | 第18-23页 |
2.1.1 细胞阻抗传感器 | 第18页 |
2.1.2 细胞阻抗传感器电极结构 | 第18-19页 |
2.1.3 细胞阻抗等效电路模型 | 第19-21页 |
2.1.4 细胞系的选择 | 第21-22页 |
2.1.5 生物反应器整体设计 | 第22-23页 |
2.2 细胞代谢电化学传感芯片 | 第23-26页 |
2.2.1 细胞代谢 | 第23页 |
2.2.2 葡萄糖电化学传感器 | 第23-24页 |
2.2.3 乳酸电化学传感器 | 第24-25页 |
2.2.4 微流控芯片系统 | 第25页 |
2.2.5 细胞代谢传感芯片整体设计 | 第25-26页 |
2.3 化学品间接毒性监测平台 | 第26-27页 |
2.4 本章小结 | 第27-28页 |
第三章 化学品间接毒性监测平台芯片制备与测试 | 第28-36页 |
3.1 生物反应器制备与测试 | 第28-30页 |
3.1.1 叉指电极层的制备 | 第28-29页 |
3.1.2 培养腔制作与传感器封装 | 第29-30页 |
3.1.3 生物反应器上下夹具的制备 | 第30页 |
3.1.4 生物反应器芯片测试 | 第30页 |
3.2 细胞代谢电化学传感芯片 | 第30-35页 |
3.2.1 葡萄糖氧化酶和乳酸氧化酶的修饰 | 第31页 |
3.2.2 PDMS通道层的制作与传感器组装 | 第31-33页 |
3.2.3 细胞代谢电化学传感芯片测试 | 第33-35页 |
3.3 本章小结 | 第35-36页 |
第四章 实验结果和讨论 | 第36-46页 |
4.1 实验部分 | 第36-37页 |
4.1.1 仪器与试剂 | 第36页 |
4.1.2 主要试剂配制 | 第36页 |
4.1.3 HepG2细胞复苏、培养、接种 | 第36-37页 |
4.1.4 生物反应器芯片处理 | 第37页 |
4.1.5 化学品间接毒性监测平台的实验设置 | 第37页 |
4.1.6 数据处理 | 第37页 |
4.2 .HepG2正常生长状态考察 | 第37-40页 |
4.2.1 细胞阻抗动态监测 | 第37-39页 |
4.2.2 葡萄糖和乳酸的检测 | 第39-40页 |
4.3 化学品作用下HepG2细胞阻抗与代谢物同时监测分析 | 第40-45页 |
4.3.1 D-山梨醇(D-Sorbitol)对HepG2细胞的影响 | 第41页 |
4.3.2 对乙酰氨基酚(Acetaminophen)对HepG2细胞的影响 | 第41页 |
4.3.3 环磷酰胺(Cyclophosphamide)对HepG2细胞的影响 | 第41-42页 |
4.3.4 胺碘酮(Amiodarone)对HepG2细胞的影响 | 第42页 |
4.3.5 鱼藤酮(Rotenone)对HepG2细胞的影响 | 第42-44页 |
4.3.6 风险评估策略 | 第44-45页 |
4.4 本章小结 | 第45-46页 |
第五章 总结与展望 | 第46-48页 |
5.1 总结 | 第46-47页 |
5.2 存在的问题 | 第47页 |
5.3 进一步的改进方案 | 第47-48页 |
参考文献 | 第48-53页 |
致谢 | 第53-54页 |
作者简介 | 第54-55页 |
导师评阅表 | 第55页 |