| 中文摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第一章 前言 | 第13-30页 |
| 1.1 缺血再灌注损伤 | 第13-14页 |
| 1.2 肾缺血再灌注 | 第14-18页 |
| 1.2.1 肾缺血再灌注的病理损伤 | 第14-15页 |
| 1.2.2 炎症反应在肾缺血再灌注损伤中的作用 | 第15-17页 |
| 1.2.3 氧化应激在肾缺血再灌注损伤中的作用 | 第17-18页 |
| 1.3 细胞凋亡在肾缺血再灌注损伤中的作用 | 第18-22页 |
| 1.3.1 细胞凋亡的形态学变化 | 第18-19页 |
| 1.3.2 细胞凋亡通路 | 第19-21页 |
| 1.3.3 Caspases在细胞凋亡中的作用 | 第21-22页 |
| 1.4 青藤碱 | 第22-23页 |
| 1.5 青藤碱对缺血再灌注损伤的保护 | 第23-25页 |
| 1.5.1 青藤碱对心脏缺血再灌注的保护 | 第23-24页 |
| 1.5.2 青藤碱对肝脏缺血再灌注的保护 | 第24页 |
| 1.5.3 青藤碱对脑缺血再灌注损伤的保护 | 第24页 |
| 1.5.4 青藤碱对肾缺血再灌注的保护 | 第24-25页 |
| 1.6 MicroRNAs | 第25-28页 |
| 1.6.1 miRNA的发现 | 第26页 |
| 1.6.2 miRNA的转录 | 第26-27页 |
| 1.6.3 miRNA在细胞核中处理的过程 | 第27页 |
| 1.6.4 miRNA的核输出 | 第27页 |
| 1.6.5 miRNA在细胞质中处理的过程 | 第27-28页 |
| 1.6.6 miRNA的作用 | 第28页 |
| 1.7 MicroRNAs与肾缺血再灌注损伤 | 第28-29页 |
| 1.8 研究目的与意义 | 第29-30页 |
| 第二章 青藤碱减轻小鼠肾缺血再灌注的损伤 | 第30-44页 |
| 2.1 实验材料 | 第30-31页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第30页 |
| 2.1.2 实验药品 | 第30页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第30页 |
| 2.1.4 主要实验仪器 | 第30-31页 |
| 2.1.5 实验材料 | 第31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-34页 |
| 2.2.1 动物分组 | 第31-32页 |
| 2.2.2 动物模型制备 | 第32页 |
| 2.2.3 给药剂量与方法 | 第32页 |
| 2.2.4 肾功能检测 | 第32页 |
| 2.2.5 组织SOD、MPA和MPO检测 | 第32-33页 |
| 2.2.6 TUNEL法检测肾组织细胞凋亡 | 第33-34页 |
| 2.3 实验结果 | 第34-40页 |
| 2.3.1 血清Cr和BUN的变化 | 第34-36页 |
| 2.3.2 肾脏组织MDA含量的变化 | 第36-37页 |
| 2.3.3 肾脏组织SOD和MPO活性的变化 | 第37-39页 |
| 2.3.4 肾脏细胞凋亡的变化 | 第39-40页 |
| 2.4 讨论 | 第40-44页 |
| 2.4.1 肾缺血再灌注损伤 | 第40-42页 |
| 2.4.2 青藤碱减轻小鼠肾缺血再灌注损伤的作用 | 第42-43页 |
| 2.4.3 青藤碱减轻小鼠肾缺血再灌注细胞凋亡的作用 | 第43-44页 |
| 第三章 青藤碱对HK-2 细胞缺氧/复氧(H/R)的保护 | 第44-69页 |
| 3.1 实验材料 | 第44-46页 |
| 3.1.1 实验细胞 | 第44页 |
| 3.1.2 实验药品 | 第44页 |
| 3.1.3 实验试剂 | 第44-45页 |
| 3.1.4 主要实验仪器 | 第45-46页 |
| 3.1.5 实验材料 | 第46页 |
| 3.2 实验方法 | 第46-53页 |
| 3.2.1 细胞培养 | 第46页 |
| 3.2.2 药物处理 | 第46页 |
| 3.2.3 建立缺氧/复氧细胞模型 | 第46-47页 |
| 3.2.4 MTT检测 | 第47页 |
| 3.2.5 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第47-48页 |
| 3.2.6 miRNA表达检测 | 第48-49页 |
| 3.2.7 miRNA转染细胞 | 第49-50页 |
| 3.2.8 双荧光素酶报告基因检测 | 第50-52页 |
| 3.2.9 Western blot分析 | 第52-53页 |
| 3.2.10 统计学分析 | 第53页 |
| 3.3 实验结果 | 第53-67页 |
| 3.3.1 不同青藤碱浓度对H/R的HK-2 细胞活性的影响 | 第53-54页 |
| 3.3.2 不同青藤碱浓度对H/R的HK-2 细胞凋亡的影响 | 第54-56页 |
| 3.3.3 H/R对HK-2 细胞miRNA表达的影响 | 第56-57页 |
| 3.3.4 不同时间点HK-2 细胞H/R模型miR124表达 | 第57-58页 |
| 3.3.5 青藤碱对HK-2 细胞H/R模型miR124表达的影响 | 第58-59页 |
| 3.3.6 miR-124 模拟物、miR-124 抑制剂转染HK-2 细胞的效果 | 第59-61页 |
| 3.3.7 双荧光素报告酶检测miR-124 与靶基因caspase 9 的结合 | 第61-63页 |
| 3.3.8 Westblot检测Caspase 9 的表达 | 第63-65页 |
| 3.3.9 青藤碱对抑制miR-124 表达的H/R HK-2 细胞活性和凋亡率的影响 | 第65-67页 |
| 3.4 讨论 | 第67-69页 |
| 3.4.1 H/R对HK-2 细胞的损害 | 第67页 |
| 3.4.2 miR-124 在HK-2 细胞H/R中的作用 | 第67-68页 |
| 3.4.3 青藤碱减轻H/R对HK-2 细胞损害的作用 | 第68-69页 |
| 第四章 结论 | 第69-71页 |
| 4.1 结论 | 第69页 |
| 4.2 本实验研究的创新性 | 第69页 |
| 4.3 本实验研究的不足之处 | 第69-70页 |
| 4.4 研究展望 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-80页 |
| 在校期间的研究成果 | 第80-81页 |
| 缩略词表 | 第81-83页 |
| 致谢 | 第83页 |
