摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
主要符号对照表 | 第10-11页 |
第1章 引言 | 第11-19页 |
1.1 桉树木质素合成调控的研究 | 第11-13页 |
1.1.1 木质素生物合成概况 | 第11页 |
1.1.2 4CL 转基因研究进展 | 第11-13页 |
1.2 桉树的抗寒性研究进展 | 第13-16页 |
1.2.1 植物超氧化物歧化酶的种类与分布 | 第14页 |
1.2.2 SOD 转基因植物在抗逆中的作用 | 第14-16页 |
1.3 本论文研究意义和课题来源 | 第16-19页 |
第2章 反义杨树 4CL1 基因转化巨尾桉调控木质素生物合成的研究 | 第19-31页 |
2.1 材料与试剂 | 第19-21页 |
2.2 实验方法 | 第21-24页 |
2.2.1 pBIgrp1.8-anti-pt4CL1 转化巨尾桉 | 第21-22页 |
2.2.2 转基因植株 PCR 鉴定 | 第22-23页 |
2.2.3 转基因植株 4CL1 酶活的检测 | 第23-24页 |
2.2.4 木质素和纤维素含量的测定 | 第24页 |
2.3 实验结果 | 第24-29页 |
2.3.1 转基因桉树的获得和初步筛选 | 第24-25页 |
2.3.2 转基因桉树的 PCR 检测 | 第25-26页 |
2.3.3 转基因桉树的 4CL 酶活性测定 | 第26页 |
2.3.4 转基因桉树木质素含量的分析 | 第26-27页 |
2.3.5 转基因桉树纤维素含量的分析 | 第27-29页 |
2.4 结论与讨论 | 第29-31页 |
第3章 抗寒基因 Cu,Zn-SOD1 植物表达载体构建与巨尾桉转化研究 | 第31-55页 |
3.1 材料 | 第31-32页 |
3.2 实验方法 | 第32-41页 |
3.2.1 构建植物二元表达载体 | 第32-37页 |
3.2.2 植物二元表达载体转化根癌农杆菌 | 第37-38页 |
3.2.3 叶盘法转化巨尾桉 | 第38页 |
3.2.4 转基因巨尾桉的 PCR 检测 | 第38-40页 |
3.2.5 转基因巨尾桉的抗寒性检测 | 第40-41页 |
3.3 实验结果 | 第41-53页 |
3.3.1 pBIeSOD 植物二元表达载体的构建 | 第41-44页 |
3.3.2 pBIeSOD 植物二元表达载体转化根癌农杆菌 | 第44页 |
3.3.3 pBIeSOD 转基因巨尾桉的获得 | 第44-45页 |
3.3.4 pBIeSOD 转基因植株 PCR 检测 | 第45-47页 |
3.3.5 pBIeSOD 转基因植株抗寒性检测 | 第47-52页 |
3.3.6 pBIeSOD 转基因植株与普通植株生长情况的比较 | 第52-53页 |
3.4 结论与讨论 | 第53-55页 |
第4章 pBD-anti-4CL1-eCSD1 双基因植物表达载体的构建与巨尾桉转化研究 | 第55-79页 |
4.1 实验材料 | 第55页 |
4.2 实验方法 | 第55-64页 |
4.2.1 双基因植物二元表达载体的构建 | 第55-63页 |
4.2.2 双基因植物二元表达载体转化根癌农杆菌 | 第63页 |
4.2.3 转基因巨尾桉的获得 | 第63页 |
4.2.4 转基因巨尾桉的 PCR 检测 | 第63-64页 |
4.2.5 转基因巨尾桉的抗寒性检测 | 第64页 |
4.3 实验结果 | 第64-78页 |
4.3.1 pBD-anti-4CL1-eCSD1 植物二元表达载体的构建 | 第64-71页 |
4.3.2 pBD-anti-4CL1-eCSD1 双基因植物二元表达载体转化根癌农杆菌 | 第71-72页 |
4.3.3 pBD-anti-4CL1-eCSD1 转基因巨尾桉的获得 | 第72-73页 |
4.3.4 pBD-anti-4CL1-eCSD1 转基因植株 PCR 检测 | 第73-74页 |
4.3.5 pBD-anti-4CL1-eCSD1 转基因植株的抗寒性检测 | 第74-77页 |
4.3.6 pBD-anti-4CL1-eCSD1 转基因植株与普通植株生长情况的比较 | 第77-78页 |
4.4 结论与讨论 | 第78-79页 |
第5章 结论与展望 | 第79-81页 |
5.1 主要研究结论 | 第79页 |
5.2 进一步的工作方向 | 第79-81页 |
参考文献 | 第81-87页 |
致谢 | 第87-89页 |
个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第89页 |