| 中英文缩略词表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 引言 | 第12-15页 |
| 实验材料 | 第15-16页 |
| 1 实验动物 | 第15页 |
| 2 实验主要试剂和器材 | 第15-16页 |
| 实验方法 | 第16-26页 |
| 1 实验动物分组 | 第16页 |
| 2 建立兔KOA模型 | 第16页 |
| 3 实验干预 | 第16-17页 |
| 3.1 超声波结合艾灸组干预 | 第16-17页 |
| 3.2 艾灸组干预 | 第17页 |
| 3.3 超声波组干预 | 第17页 |
| 3.4 模型组和正常组干预 | 第17页 |
| 4 标本采集及大体观察 | 第17-18页 |
| 4.1 滑液标本采集 | 第17页 |
| 4.2 滑膜标本采集 | 第17-18页 |
| 4.3 股骨内侧髁标本采集 | 第18页 |
| 4.4 软骨标本采集 | 第18页 |
| 5 组织形态学观察 | 第18-20页 |
| 5.1 软骨和滑膜组织固定及软骨脱钙 | 第18页 |
| 5.2 软骨和滑膜标本包埋 | 第18-19页 |
| 5.3 软骨和滑膜标本切片 | 第19页 |
| 5.4 HE染色步骤 | 第19-20页 |
| 6 免疫组化检测 | 第20-21页 |
| 7 WB检测 | 第21-23页 |
| 7.1 蛋白提取 | 第21页 |
| 7.2 总蛋白溶度测定 | 第21页 |
| 7.3 蛋白变性 | 第21页 |
| 7.4 SDS-PAGE凝胶的制作 | 第21-22页 |
| 7.5 电泳 | 第22-23页 |
| 8 RT-qPCR检测 | 第23-25页 |
| 8.1 引物设计及合成 | 第23页 |
| 8.2 提取RNA | 第23页 |
| 8.3 总RNA的鉴定 | 第23-24页 |
| 8.4 cDNA的合成 | 第24-25页 |
| 9 统计学处理 | 第25-26页 |
| 实验结果 | 第26-42页 |
| 1 一般情况 | 第26页 |
| 2 各组组织形态学大体肉眼观察 | 第26-28页 |
| 2.1 各组软骨表面肉眼观察比较 | 第26-27页 |
| 2.2 各组滑膜形态学肉眼观察比较 | 第27-28页 |
| 3 各组组织染色及评分比较 | 第28-30页 |
| 3.1 各组软骨组织HE染色及其改良Mankin评分比较 | 第28-29页 |
| 3.2 各组滑膜组织HE染色及其评分比较 | 第29-30页 |
| 4 各组软骨和滑膜免疫组化比较 | 第30-36页 |
| 4.1 各组软骨细胞VEGF、MMP-9、TIMP-1免疫组化比较 | 第30-33页 |
| 4.2 各组滑膜细胞VEGF、MMP-9、TIMP-1免疫组化比较 | 第33-36页 |
| 5 各组软骨MMP-9和滑液VEGF、MMP-9、TIMP-1蛋白表达的比较 | 第36-39页 |
| 5.1 各组软骨MMP-9蛋白表达结果 | 第36-38页 |
| 5.2 各组滑液VEGF、MMP-9、TIMP-1蛋白表达的结果 | 第38-39页 |
| 6 软骨MMP-9、VEGF和滑液VEGFmRNA表达的比较 | 第39-42页 |
| 6.1 软骨MMP-9、VEGF和滑液VEGF以及其各自β-actin的扩增和溶解曲线(附录C) | 第39-40页 |
| 6.2 软骨VEGF、MMP-9mRNA和滑液VEGFmRNA表达结果 | 第40-42页 |
| 讨论 | 第42-52页 |
| 1 兔KOA模型研究 | 第42-43页 |
| 2 祖国医学对KOA的认识 | 第43页 |
| 3 现代医学对KOA的认识 | 第43-44页 |
| 4 VEGF、MMP-9和TIMP-1对KOA的影响 | 第44-46页 |
| 5 艾灸和超声波对KOA的治疗作用 | 第46-51页 |
| 6 不足与展望 | 第51-52页 |
| 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 附录 | 第59-62页 |
| 文献综述 | 第62-68页 |
| 参考文献 | 第65-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 作者简历 | 第69页 |
