| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第11-17页 |
| 1.1 神经干细胞 (neural stem cells, NSCs) 的研究概况 | 第11-13页 |
| 1.1.1 NSCs 的发现 | 第11页 |
| 1.1.2 NSCs 的来源与分布 | 第11页 |
| 1.1.3 NSCs 的生物学特性 | 第11-12页 |
| 1.1.4 NSCs 的分离与培养 | 第12页 |
| 1.1.5 NSCs 的分化机制 | 第12-13页 |
| 1.2 膜片钳技术 (patch-clamp technique) 的应用及原理 | 第13-15页 |
| 1.3 膜片钳技术 (patch-clamp technique) 在 NSCs 方面的应用 | 第15-16页 |
| 1.3.1 NSCs 与膜片钳技术 | 第15页 |
| 1.3.2 NSCs 细胞膜上的离子通道 | 第15-16页 |
| 1.4 本研究的目的与意义 | 第16-17页 |
| 第2章 新生 SD 大鼠海马神经干细胞体外培养及生物学特性的鉴定 | 第17-26页 |
| 2.1 引言 | 第17页 |
| 2.2 实验材料与试剂 | 第17-20页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第17页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第17页 |
| 2.2.3 试剂与药品 | 第17-18页 |
| 2.2.4 试剂的制备 | 第18-20页 |
| 2.3 实验方法 | 第20-22页 |
| 2.3.1 NSCs 的分离 | 第20页 |
| 2.3.2 NSCs 的原代培养 | 第20页 |
| 2.3.3 NSCs 的传代培养 | 第20页 |
| 2.3.4 NSCs 特性鉴定 | 第20-21页 |
| 2.3.5 NSCs 的诱导分化及鉴定 | 第21-22页 |
| 2.4 结果与分析 | 第22-25页 |
| 2.4.1 原代观察 | 第22页 |
| 2.4.2 传代观察 | 第22-23页 |
| 2.4.3 特性鉴定 | 第23-24页 |
| 2.4.4 诱导后的观察及鉴定 | 第24-25页 |
| 2.5 讨论 | 第25-26页 |
| 第3章 新生 SD 大鼠海马神经干细胞冷冻与复苏的研究 | 第26-33页 |
| 3.1 引言 | 第26页 |
| 3.2 实验材料与试剂 | 第26-27页 |
| 3.2.1 材料 | 第26页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第26页 |
| 3.2.3 试剂和药品 | 第26页 |
| 3.2.4 试剂的制备 | 第26-27页 |
| 3.3 实验方法 | 第27页 |
| 3.3.1 NSCs 的冻存与复苏 | 第27页 |
| 3.3.2 NSCs 复苏率的计算 | 第27页 |
| 3.3.3 NSCs 冻存复苏后鉴定 | 第27页 |
| 3.4 结果与分析 | 第27-31页 |
| 3.4.1 DMSO 浓度和冻存时间对 NSCs 复苏率的影响 | 第27-30页 |
| 3.4.2 NSCs 复苏后鉴定 | 第30-31页 |
| 3.5 讨论 | 第31-33页 |
| 第4章 新生 SD 大鼠海马神经干细胞诱导分化及分化过程中钾电流的变化 | 第33-38页 |
| 4.1 引言 | 第33页 |
| 4.2 实验材料与试剂 | 第33页 |
| 4.2.1 材料 | 第33页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第33页 |
| 4.2.3 试剂与药品 | 第33页 |
| 4.3 实验方法 | 第33-35页 |
| 4.3.1 NSCs 的分离、体外培养及分化 | 第33-34页 |
| 4.3.2 全细胞膜片钳 (whole-cell recording) 不同诱导时间钾通道的变化 | 第34页 |
| 4.3.3 数据处理与分析 | 第34-35页 |
| 4.4 结果与分析 | 第35-37页 |
| 4.4.1 NSCs 的分化及鉴定 | 第35页 |
| 4.4.2 不同分化天数钾通道的变化 | 第35-37页 |
| 4.5 讨论 | 第37-38页 |
| 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-47页 |
| 致谢 | 第47页 |
