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奥克梯隆型人参皂苷的半合成及生物活性研究

摘要第4-7页
Abstract第7-10页
第一章 绪论第17-63页
    1.1 人参皂苷类化学成分的分离与鉴定第17-21页
    1.2 人参皂苷类化学成分的结构分类第21-33页
        1.2.1 原人参二醇型第22-23页
        1.2.2 原人参三醇型第23-25页
        1.2.3 齐墩果烷型第25-26页
        1.2.4 奥克梯隆型第26页
        1.2.5 其他类型第26-33页
    1.3 人参皂苷类化学成分的药理作用第33-39页
        1.3.1 抗肿瘤作用第34-35页
        1.3.2 抗氧化作用第35-36页
        1.3.3 心脑血管保护作用第36-37页
        1.3.4 免疫增强作用第37页
        1.3.5 中枢神经保护作用第37-38页
        1.3.6 其他药理作用第38-39页
    1.4 人参皂苷类化学成分的降解与结构修饰第39-42页
        1.4.1 物理降解第39-40页
        1.4.2 化学降解第40页
        1.4.3 生物降解第40-41页
        1.4.4 结构修饰第41-42页
    1.5 奥克梯隆型人参皂苷的研究进展第42-47页
        1.5.1 奥克梯隆型人参皂苷化学成分的分离第42页
        1.5.2 奥克梯隆型人参皂苷的半合成第42-45页
        1.5.3 奥克梯隆型人参皂苷的药理作用第45-47页
    1.6 研究内容和意义第47-49页
    参考文献第49-63页
第二章 原人参二醇组次级人参皂苷及其苷元的氧化修饰第63-95页
    2.1 实验仪器、试剂与材料第63-64页
        2.1.1 实验仪器第63-64页
        2.1.2 试剂与材料第64页
    2.2 实验方法第64-69页
        2.2.1 氧化修饰第64页
        2.2.2 分离纯化第64-69页
    2.3 结构鉴定第69-88页
        2.3.1 20(S)-原人参二醇氧化产物的结构鉴定第69-72页
        2.3.2 20(R)-原人参二醇氧化产物的结构鉴定第72-78页
        2.3.3 20(S)-人参皂苷Rh2氧化产物的结构鉴定第78-79页
        2.3.4 20(R)-人参皂苷Rh2氧化产物的结构鉴定第79-84页
        2.3.5 20(S)-人参皂苷Rg3氧化产物的结构鉴定第84-87页
        2.3.6 20(R)-人参皂苷Rg3氧化产物的结构鉴定第87-88页
    2.4 结果与讨论第88-92页
    2.5 本章小结第92-93页
    参考文献第93-95页
第三章 原人参三醇组次级人参皂苷及其苷元的氧化修饰第95-121页
    3.1 实验仪器、试剂与材料第95-96页
        3.1.1 实验仪器第95页
        3.1.2 试剂与材料第95-96页
    3.2 实验方法第96-100页
        3.2.1 氧化方法第96页
        3.2.2 分离纯化第96-100页
    3.3 结构鉴定第100-117页
        3.3.1 20(S)-原人参三醇氧化产物的结构鉴定第100-105页
        3.3.2 20(R)-原人参三醇氧化产物的结构鉴定第105-108页
        3.3.3 20(S)-人参皂苷Rh1氧化产物的结构鉴定第108-111页
        3.3.4 20(R)-人参皂苷Rh1氧化产物的结构鉴定第111-114页
        3.3.5 20(S)-人参皂苷Rg2氧化产物的结构鉴定第114页
        3.3.6 20(R)-人参皂苷Rg2氧化产物的结构鉴定第114-117页
    3.4 结果与讨论第117-118页
    3.5 本章小结第118-119页
    参考文献第119-121页
第四章 次级人参皂苷及其苷元氧化产物的抗肿瘤活性研究第121-143页
    4.1 实验主要仪器、试剂与材料第123-124页
        4.1.1 实验仪器第123-124页
        4.1.2 试剂与材料第124页
    4.2 溶液的配制第124-125页
    4.3 实验方法第125-127页
        4.3.1 细胞培养第125页
        4.3.2 MTT比色法第125页
        4.3.3 凋亡细胞形态学观察第125-126页
        4.3.4 体外Caspase活力测定第126页
        4.3.5 免疫印迹(Western Blot)分析第126-127页
    4.4 结果与讨论第127-138页
        4.4.1 细胞增殖抑制作用第127-134页
        4.4.2 拟人参皂苷元PDQ抑制细胞增殖作用机制研究第134-138页
    4.5 本章小结第138-140页
    参考文献第140-143页
第五章 次级人参皂苷及其苷元氧化产物的抗氧化作用研究第143-163页
    5.1 实验仪器、试剂和材料第145-146页
        5.1.1 实验仪器第145-146页
        5.1.2 试剂与材料第146页
    5.2 溶液的配制第146-147页
    5.3 化学体系清除自由基能力的测试第147-149页
        5.3.1 猝灭DPPH自由基第147-148页
        5.3.2 猝灭ABTS~(+ ·)自由基第148页
        5.3.3 猝灭Galvinoxyl自由基第148-149页
    5.4 化学模拟生物体系抗氧化能力的测试第149-151页
        5.4.1 抑制羟基自由基引发DNA损伤第150页
        5.4.2 抑制Cu~(2+)/GSH体系引发DNA损伤第150-151页
    5.5 结果与讨论第151-157页
        5.5.1 淬灭自由基第151-155页
        5.5.2 抑制DNA氧化损伤第155-157页
    5.6 本章小结第157-158页
    参考文献第158-163页
第六章 拟人参皂苷PDQ及24(R)-异构体的半合成工艺研究第163-183页
    6.1 实验仪器、试剂和材料第164-165页
        6.1.1 实验仪器第164页
        6.1.2 试剂和材料第164-165页
    6.2 含量测定方法第165-167页
        6.2.1 薄层色谱条件第165页
        6.2.2 液相色谱条件第165-167页
    6.3 含量测定的方法学考察第167-170页
        6.3.1 标准曲线第167页
        6.3.2 精密度第167-168页
        6.3.3 重复性第168-169页
        6.3.5 稳定性第169页
        6.3.6 回收率第169-170页
    6.4 半合成条件考察第170-176页
        6.4.1 氧化剂第170-171页
        6.4.2 氧化剂用量第171-173页
        6.4.3 反应溶剂第173页
        6.4.4 反应温度第173-174页
        6.4.5 反应时间第174-175页
        6.4.6 反应物浓度第175-176页
        6.4.7 最佳氧化条件的确立第176页
    6.5 结果与讨论第176-179页
    6.6 本章小结第179-181页
    参考文献第181-183页
第七章 总结第183-185页
    7.1 结论第183-184页
    7.2 展望第184-185页
附图第185-261页
作者简介及科研成果第261-263页
致谢第263页

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