摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-15页 |
第一篇 水稻株型调控基因 TE 的功能分析 | 第15-49页 |
第一章 绪论 | 第15-28页 |
·水稻分蘖形成过程中的形态学变化 | 第15-16页 |
·水稻分枝发生机理的研究进展 | 第16-22页 |
·水稻分蘖发生的分子机制 | 第16-20页 |
·水稻穗分枝发生的分子机制 | 第20-22页 |
·APC/CCdh1研究进展 | 第22-27页 |
·E3 连接酶的分类 | 第22页 |
·E3 连接酶 APC/C 的结构和泛素化过程 | 第22-24页 |
·APC/CCdh1在细胞周期中的作用 | 第24-25页 |
·APC/CCdh1的其他生物学功能 | 第25-27页 |
·本研究的目的和意义 | 第27-28页 |
第二章 水稻多分蘖突变体(te)的克隆和功能分析 | 第28-49页 |
·研究材料 | 第28页 |
·试验方法 | 第28-31页 |
·te 突变体的形态学和组织学观察 | 第28页 |
·te 突变体的互补验证和过表达分析 | 第28-29页 |
·农杆菌介导的水稻遗传转化 | 第29页 |
·TE 基因的 RT-PCR 分析 | 第29页 |
·GUS 活性的组织化学染色分析 | 第29页 |
·TE 的 RNA 组织原位杂交分析 | 第29-30页 |
·TE 蛋白的亚细胞定位 | 第30页 |
·流式细胞仪和石蜡切片观察叶肉细胞倍性 | 第30页 |
·TE 在裂殖酵母中的过表达分析 | 第30页 |
·双分子荧光互补分析 | 第30-31页 |
·试验结果 | 第31-45页 |
·te 突变体的表型和组织学观察 | 第31-34页 |
·te 突变体的互补验证 | 第34页 |
·TE 是 Cdh1 在水稻中的同源基因 | 第34-37页 |
·TE 基因表达模式和蛋白亚细胞定位 | 第37-39页 |
·TE 具有保守的细胞周期调控功能 | 第39-41页 |
·TE 与 CDC27 和 MOC1 存在相互作用 | 第41-43页 |
·TE 的过表达分析 | 第43-45页 |
·讨论 | 第45-49页 |
·te 突变体是个一因多效突变体 | 第45页 |
·TE 是 Cdh1 类基因 | 第45-46页 |
·TE 参与水稻细胞周期的调控 | 第46-47页 |
·TE 通过 Ls/Las/MOC1 途径参与水稻分蘖的调控 | 第47-48页 |
·TE 是腋生分生组织形成的负调控因子 | 第48-49页 |
第二篇 水稻类病变突变体(lms1)的图位克隆和功能分析 | 第49-85页 |
第三章 绪论 | 第49-63页 |
·植物类病变突变体研究进展 | 第49-56页 |
·类病变突变体的概念及分类 | 第49-50页 |
·类病变的发生机制 | 第50-52页 |
·类病变突变体的抗病性研究 | 第52-53页 |
·植物中类病变突变体的基因克隆 | 第53-56页 |
·植物脂氢过氧化物裂解酶(HPL)代谢途径的研究进展 | 第56-61页 |
·植物 LOX-HPL 途径概述 | 第56-57页 |
·植物脂氢过氧化物裂解酶的生化功能 | 第57-59页 |
·植物中脂氢过氧化物裂解酶的基因克隆 | 第59-61页 |
·本研究的目的及意义 | 第61-63页 |
第四章 水稻类病变突变体的遗传分析和精细定位 | 第63-74页 |
·材料与方法 | 第63-66页 |
·植物材料 | 第63页 |
·田间种植 | 第63页 |
·野生型与突变体表型鉴定 | 第63页 |
·花器官形态解剖及花粉活力观察 | 第63-64页 |
·水稻类病变突变体的细胞学分析 | 第64页 |
·光照对突变体表型的诱导反应 | 第64页 |
·水稻基因组 DNA 提取 | 第64-65页 |
·SSR 分子标记检测 | 第65页 |
·分子标记的选择和开发 | 第65页 |
·LMS1 基因的初步定位和精细定位 | 第65-66页 |
·结果 | 第66-71页 |
·水稻类病变突变体表型鉴定 | 第66-67页 |
·水稻类病变突变体花器官结构和花粉育性的观察 | 第67页 |
·水稻类病变突变体的细胞死亡鉴定 | 第67-68页 |
·水稻类病变突变体表型受光照强度诱导 | 第68-69页 |
·水稻类病变突变体的遗传分析 | 第69页 |
·水稻类病变突变体 LMS1 基因的初定位 | 第69-70页 |
·水稻类病变突变体 LMS1 基因的精细定位 | 第70-71页 |
·讨论 | 第71-74页 |
·水稻类病变突变体属于自发型、全生育期的扩展型类病变 | 第71-72页 |
·lms1 突变体的细胞坏死伴随着 H2O2和胼胝质的积累 | 第72页 |
·定位群体的构建 | 第72页 |
·定位区间候选基因分析 | 第72-74页 |
第五章 水稻类病变基因 LMS1 的克隆和功能分析 | 第74-83页 |
·材料与方法 | 第74-76页 |
·植物材料 | 第74页 |
·试剂、质粒和菌株 | 第74页 |
·候选基因的 DNA 序列分析 | 第74页 |
·LMS1 基因组互补载体的构建 | 第74-75页 |
·LMS1 在 RNA 水平的表达检测 | 第75页 |
·绿叶挥发物质的提取和 GC-MS 分析 | 第75页 |
·过氧化脂质提取和测定 | 第75-76页 |
·结果与分析 | 第76-80页 |
·候选基因 LMS1 的序列分析 | 第76-77页 |
·插入片段结构分析 | 第77页 |
·基因组互补植株的 PCR 检测及表型分析 | 第77页 |
·LMS1 在 RNA 水平上的表达检测 | 第77-78页 |
·绿叶挥发物质含量的检测 | 第78-79页 |
·叶片中过氧化脂质含量的检测 | 第79-80页 |
·讨论 | 第80-83页 |
·基因 LMS1 的插入失活导致水稻类病变的发生 | 第80页 |
·LMS1 编码 LOX-HPL 代谢途径中的 OsHPL3 | 第80页 |
·LMS1 负责水稻叶片中 GLVs 的合成 | 第80-81页 |
·lms1 突变体中类病变的发生可能与过氧化脂质的积累有关 | 第81-83页 |
第六章 全文结论 | 第83-85页 |
参考文献 1 | 第85-94页 |
参考文献 2 | 第94-104页 |
附录 | 第104-109页 |
致谢 | 第109-110页 |
作者简历 | 第110页 |