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重组抗CD20单克隆抗体工程细胞珠的构建

中文摘要第4-6页
ABSTRACT第6-7页
中英文对照表第9-13页
第1章 绪论第13-18页
    1.1 CD20单克隆抗体概述第13页
    1.2 应用和挑战第13-14页
    1.3 实验设计思路第14-18页
第2章 材料与试剂第18-20页
    2.1 实验材料第18-19页
    2.2 主要器材和实验仪器第19-20页
第3章 实验方法第20-56页
    3.1 抗CD20单抗基因合成第20-22页
    3.2 PREA202表达载体的构建第22-27页
        3.2.1 PCR克隆dhfr基因表达单元第22-23页
        3.2.2 dhfr表达单元PCR产物及pCDNA3.5(+)载体双酶切第23-24页
        3.2.3 酶切片段的胶回收第24页
        3.2.4 连接及转化及克隆筛选第24-27页
    3.3 PREA202/REA202H表达载体的构建第27-30页
        3.3.1 抗CD20单抗的重链和pREA202载体酶切片段的制备第27-28页
        3.3.2 双酶切重链片段和pREA202载体的连接转化和克隆鉴定第28-30页
    3.4 PREA202/REA202L表达载体的构建第30-32页
        3.4.1 抗CD20单抗的轻链和pREA202载体酶切片段的制备第30页
        3.4.2 双酶切轻链片段和pREA202载体的连接转化和克隆鉴定第30-32页
    3.5 表达REA202蛋白的工程细胞株的构建第32-35页
        3.5.1 细胞复苏第34页
        3.5.2 细胞培养和扩增传代第34页
        3.5.3 实验方法第34页
        3.5.4 实验结果第34-35页
    3.6 细胞接种密度考察第35-36页
        3.6.1 细胞复苏第35页
        3.6.2 细胞培养和扩增传代第35页
        3.6.3 实验方法第35页
        3.6.4 实验结果第35-36页
    3.7 培养温度第36-37页
        3.7.1 细胞复苏第36页
        3.7.2 细胞培养和扩增传代第36页
        3.7.3 实验方法第36页
        3.7.4 实验结果第36-37页
    3.8 表达REA202蛋白的工程细胞株的构建第37-53页
        3.8.1 pBF01/REA202H和pBF01/REA202L质粒线性化第38页
        3.8.2 共转染CHO-DG44细胞第38-39页
        3.8.3 阳性克隆筛选第39-40页
        3.8.4 MTX加压筛选第40-41页
        3.8.5 工程细胞株的初步鉴定第41-52页
        3.8.7 表达产物鉴别第52-53页
    3.9 原始细胞库、主细胞库、工作细胞库的建立第53-54页
        3.9.1 原始细胞库的建立第53-54页
    3.10 主细胞库的建立第54页
    3.13 细胞库的考察和检定第54页
    3.14 细胞库细胞复苏率考察第54-55页
    3.15 细胞库细胞形态学考察第55页
    3.16 细胞倍增时间考察第55页
    3.17 REA202WCB20111228工作细胞库的检定第55-56页
第4章 结果分析与讨论第56-58页
第5章 结论第58-59页
参考文献第59-62页
致谢第62页

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