| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 第一章 绪论 | 第16-64页 |
| 前言 | 第16页 |
| 1 毛细管电泳的基本原理 | 第16-19页 |
| 1.1 毛细管凝胶电泳 | 第17页 |
| 1.2 分离度 | 第17-18页 |
| 1.3 电渗流 | 第18页 |
| 1.4 毛细管电泳的电泳类型 | 第18-19页 |
| 2 毛细管电泳在核酸分析上的优势 | 第19-21页 |
| 3 毛细管电泳技术在核酸分析领域的应用 | 第21-31页 |
| 3.1 细菌病原体的鉴定、基因分型和耐药性研究 | 第22-23页 |
| 3.2 病毒诊断 | 第23页 |
| 3.3 遗传性疾病诊断 | 第23-25页 |
| 3.4 肿瘤诊断 | 第25-28页 |
| 3.5 其它相关诊断 | 第28-29页 |
| 3.6 RNA分析 | 第29-30页 |
| 3.7 诊断新方法 | 第30-31页 |
| 4 毛细管电泳技术在核酸分析上存在的问题 | 第31-33页 |
| 5 毛细管电泳场放大富集技术概述 | 第33-59页 |
| 5.1 场放大富集的基本原则 | 第33-56页 |
| 5.2 毛细管场放大富集技术的优势，缺点和今后的发展趋势 | 第56-59页 |
| 6 技术路线 | 第59-60页 |
| 7 课题的主要研究内容及目的 | 第60-64页 |
| 第二章 场放大样品堆积提高毛细管凝胶电泳-紫外检测核酸灵敏度 | 第64-77页 |
| 前言 | 第64页 |
| 1.实验仪器、材料和方法 | 第64-66页 |
| 1.1 实验仪器 | 第64-65页 |
| 1.2 实验材料 | 第65页 |
| 1.3 实验方法 | 第65-66页 |
| 2 结果与分析 | 第66-75页 |
| 2.1 评估毛细管电泳体系的稳定性 | 第66-67页 |
| 2.2 场放大样品堆积的机制 | 第67页 |
| 2.3 常规压力进样的检测灵敏度 | 第67页 |
| 2.4 场放大样品堆积参数的优化 | 第67-72页 |
| 2.5 场放大样品堆积的检测灵敏度 | 第72页 |
| 2.6 FASS的场放大富集效果远大于稀释效应 | 第72-73页 |
| 2.7．FASS的线性，精密度和重复性 | 第73-75页 |
| 3 本章小结 | 第75-76页 |
| 4 FASS的不足 | 第76-77页 |
| 第三章 基质场放大堆积注射提高毛细管凝胶电泳-紫外检测核酸灵敏度 | 第77-88页 |
| 前言 | 第77页 |
| 1.实验仪器、材料和方法 | 第77-79页 |
| 1.1 实验仪器 | 第77-78页 |
| 1.2 实验材料 | 第78页 |
| 1.3 实验方法 | 第78-79页 |
| 2 结果和讨论 | 第79-86页 |
| 2.1 基质场放大堆积注射的机制 | 第79页 |
| 2.2 常规电动进样的检测灵敏度 | 第79-80页 |
| 2.3 分离电压的优化 | 第80页 |
| 2.4 基质场放大堆积注射参数的优化 | 第80-83页 |
| 2.5 基质场放大堆积注射的灵敏度 | 第83页 |
| 2.6 M-FASI的场放大富集效应远大于稀释效应 | 第83-85页 |
| 2.7 M-FASI的线性，精密度和重复性 | 第85-86页 |
| 3 本章小结 | 第86-87页 |
| 4 M-FASI方法的不足 | 第87-88页 |
| 第四章 联合使用基质场放大和柱头场放大堆积注射提高毛细管凝胶电泳-紫外检测核酸灵敏度 | 第88-114页 |
| 前言 | 第88-89页 |
| 1 实验仪器、材料和方法 | 第89-92页 |
| 1.1 实验仪器及设备 | 第89页 |
| 1.2 实验材料 | 第89-91页 |
| 1.3 方法 | 第91-92页 |
| 2 结果与讨论 | 第92-111页 |
| 2.1 场放大富集技术的基本原理 | 第92页 |
| 2.2 C-FASI的机制 | 第92-95页 |
| 2.3 分离条件的优化 | 第95-96页 |
| 2.4 C-FASI条件的优化 | 第96-101页 |
| 2.5 C-FASI的富集效应远大于稀释效应 | 第101-104页 |
| 2.6 C-FASI与其它富集技术在提高核酸检测灵敏度方面的比较 | 第104-107页 |
| 2.7 C-FASI的线性、精密度和重复性 | 第107-111页 |
| 3 结论 | 第111页 |
| 4 讨论 | 第111-113页 |
| 5 本章小结 | 第113-114页 |
| 第五章 基于场放大富集的CGE-UV在何首乌PCR-RFLP分子鉴定中的应用 | 第114-132页 |
| 前言 | 第114-115页 |
| 1 实验材料、实验仪器和实验方法 | 第115-120页 |
| 1.1 实验材料 | 第115-117页 |
| 1.2 实验仪器和设备 | 第117-118页 |
| 1.3 实验方法 | 第118-120页 |
| 2 结果与分析 | 第120-126页 |
| 2.1 ITS2序列的扩增结果及序列分析 | 第120页 |
| 2.2 ITS2序列的酶谱分析 | 第120-121页 |
| 2.3 基于平板凝胶电泳的PCR-RFLP分子鉴定何首乌植物及其伪品 | 第121-122页 |
| 2.4 基于毛细管凝胶电泳的PCR-RFLP分子鉴定何首乌及其伪品 | 第122-126页 |
| 3 讨论 | 第126-130页 |
| 4 本章小结 | 第130-132页 |
| 第六章 基于场放大富集的CGE-UV在SNP-PCR鉴定何首乌及其伪品中的应用 | 第132-145页 |
| 前言 | 第132-133页 |
| 1 实验材料、实验仪器和实验方法 | 第133-136页 |
| 1.1 实验材料 | 第133-134页 |
| 1.2 实验仪器和设备 | 第134页 |
| 1.3 实验方法 | 第134-136页 |
| 2 结果与分析 | 第136-141页 |
| 2.1 SNP特异性引物的设计 | 第136页 |
| 2.2 PCR反应条件的确定 | 第136-139页 |
| 2.3 何首乌植物及中药材特异性引物PCR鉴别 | 第139页 |
| 2.4 基于毛细管凝胶电泳的SNP-PCR鉴定何首乌及其伪品 | 第139-141页 |
| 3 讨论 | 第141-144页 |
| 4 本章小结 | 第144-145页 |
| 结论与展望 | 第145-148页 |
| 1 结论 | 第145-146页 |
| 2 本论文的创新点 | 第146页 |
| 3 展望 | 第146-148页 |
| 参考文献 | 第148-172页 |
| 附录 | 第172-174页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第174-176页 |
| 致谢 | 第176-177页 |
| 附件 | 第177页 |
