| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 第一章 概论 | 第10-20页 |
| 1.1 研究背景 | 第10页 |
| 1.2 铅神经毒性简介 | 第10-16页 |
| 1.2.1 铅及铅中毒现状 | 第10-11页 |
| 1.2.2 铅中毒的检测方法 | 第11-12页 |
| 1.2.3 铅的神经毒性 | 第12页 |
| 1.2.4 铅神经毒性机制 | 第12-14页 |
| 1.2.4.1 氧化应激损伤机制 | 第12-13页 |
| 1.2.4.2 铅的离子机制 | 第13页 |
| 1.2.4.3 铅对神经递质及传导的影响 | 第13页 |
| 1.2.4.4 铅对脑神经元及相关蛋白的影响机制 | 第13-14页 |
| 1.2.4.5 其他机制 | 第14页 |
| 1.2.5 铅中毒神经保护药物的研究现状 | 第14-16页 |
| 1.2.5.1 中药及其提取物对铅致神经毒性的保护作用 | 第14-15页 |
| 1.2.5.2 传统驱铅药物神经保护作用 | 第15页 |
| 1.2.5.3 神经节苷脂的神经保护作用 | 第15-16页 |
| 1.3 丹参酮ⅡA简介 | 第16-17页 |
| 1.3.1 对心血管系统的作用 | 第16页 |
| 1.3.2 抗癌作用 | 第16-17页 |
| 1.3.3 脑保护作用 | 第17页 |
| 1.4 研究的目标、内容、意义和创新点 | 第17-20页 |
| 1.4.1 研究目标 | 第17页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第17-18页 |
| 1.4.3 研究意义 | 第18页 |
| 1.4.4 创新点 | 第18-20页 |
| 第二章 动物模型构建及相关生物标记物检测研究 | 第20-28页 |
| 2.1 引言 | 第20页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第20-21页 |
| 2.2.1 试剂配置 | 第21页 |
| 2.3 实验动物 | 第21-22页 |
| 2.4 实验方法 | 第22-23页 |
| 2.4.1 动物模型构建 | 第22页 |
| 2.4.2 模型动物血铅水平检测 | 第22-23页 |
| 2.4.3 模型动物海马铅水平检测 | 第23页 |
| 2.4.4 统计分析 | 第23页 |
| 2.5 实验结果 | 第23-26页 |
| 2.5.1 丹参酮ⅡA改善铅中毒大鼠体重下降的作用 | 第23-24页 |
| 2.5.2 铅暴露及丹参酮ⅡA对大鼠血铅水平的影响 | 第24-25页 |
| 2.5.3 铅暴露导致大鼠海马铅水平升高的作用 | 第25-26页 |
| 2.6 讨论 | 第26-28页 |
| 第三章 铅中毒对大鼠学习记忆能力影响的研究 | 第28-40页 |
| 3.1 引言 | 第28页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第28-29页 |
| 3.3 实验动物 | 第29页 |
| 3.4 实验方法 | 第29-32页 |
| 3.4.1 Morris水迷宫实验 | 第29-30页 |
| 3.4.2 血清样本采集 | 第30-31页 |
| 3.4.3 一氧化氮含量检测 | 第31页 |
| 3.4.4 脑源性神经营养因子检测 | 第31-32页 |
| 3.5 实验结果 | 第32-37页 |
| 3.5.1 Morris水迷宫参照学习实验结果 | 第32-33页 |
| 3.5.2 铅暴露对大鼠逃避潜伏期的影响 | 第33-34页 |
| 3.5.3 铅暴露对大鼠空间探索指标的影响 | 第34-36页 |
| 3.5.4 铅暴露减少体内NO和BDNF含量 | 第36-37页 |
| 3.6 讨论 | 第37-40页 |
| 第四章 丹参酮ⅡA对铅中毒大鼠脑损伤的保护作用研究 | 第40-52页 |
| 4.1 引言 | 第40页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第40-42页 |
| 4.3 实验动物 | 第42页 |
| 4.4 实验方法 | 第42-45页 |
| 4.4.1 组织蛋白提取 | 第42页 |
| 4.4.2 蛋白定量与变性 | 第42页 |
| 4.4.3 免疫印迹实验(Western blot) | 第42-43页 |
| 4.4.4 伊红染色(HE)实验 | 第43-44页 |
| 4.4.5 免疫组织化学实验(IHC) | 第44-45页 |
| 4.5 实验结果 | 第45-50页 |
| 4.5.1 丹参酮ⅡA对铅中毒大鼠凋亡蛋白Bcl-2、Bax表达水平的影响 | 第45-46页 |
| 4.5.2 丹参酮ⅡA改善铅暴露导致的海马病理性改变 | 第46-48页 |
| 4.5.3 各组大鼠免疫组织化学实验结果 | 第48-50页 |
| 4.6 讨论 | 第50-52页 |
| 第五章 丹参酮ⅡA保护铅致脑神经损伤的氧化机制研究 | 第52-58页 |
| 5.1 引言 | 第52页 |
| 5.2 实验材料与仪器 | 第52-53页 |
| 5.3 实验动物 | 第53页 |
| 5.4 实验方法 | 第53-55页 |
| 5.4.1 总超氧化物歧化酶试剂盒(T-SOD)检测 | 第53-54页 |
| 5.4.2 谷胱甘肽试剂盒(GSH)检测 | 第54页 |
| 5.4.3 丙二醛试剂盒(MDA)检测 | 第54-55页 |
| 5.4.4 统计分析 | 第55页 |
| 5.5 实验结果 | 第55-56页 |
| 5.5.1 丹参酮ⅡA对铅中毒大鼠体内总SOD和GSH含量的影响 | 第55-56页 |
| 5.5.2 丹参酮ⅡA对铅中毒大鼠体内总MDA含量的影响 | 第56页 |
| 5.6 讨论 | 第56-58页 |
| 第六章 结论 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 在读期间发表论文情况 | 第67页 |
