| 中文摘要 | 第11-13页 |
| Abstract | 第13-16页 |
| 第一章 综述 | 第17-39页 |
| 1.1 植物铝毒害研究进展 | 第17-32页 |
| 1.1.1 铝毒害与活性氧、氧化胁迫有关 | 第17-18页 |
| 1.1.2 铝毒害与pH之间的关系 | 第18-19页 |
| 1.1.3 缓解铝毒害的机制 | 第19-23页 |
| 1.1.3.1 添加外源物质 | 第19-20页 |
| 1.1.3.2 有机酸的分泌 | 第20-21页 |
| 1.1.3.3 铝毒害与酶活性 | 第21-22页 |
| 1.1.3.4 植株自身的调控以及有机阴离子的释放 | 第22页 |
| 1.1.3.5 铝毒害的新机制：细胞质中Ca信号的消极调节 | 第22页 |
| 1.1.3.6 蛋白质的变化 | 第22-23页 |
| 1.1.4 铝毒害对植物生理方面的影响 | 第23-24页 |
| 1.1.5 铝毒害分子方面研究进展 | 第24-28页 |
| 1.1.5.1 与铝毒害相关基因的研究 | 第24-26页 |
| 1.1.5.2 与铝毒害相关的micRNA研究进展 | 第26页 |
| 1.1.5.3 与转录组相关 | 第26-28页 |
| 1.1.6 提高植物的耐铝机制及策略 | 第28-29页 |
| 1.1.6.1 提高耐铝性的两种策略 | 第28页 |
| 1.1.6.2 调节激素水平 | 第28页 |
| 1.1.6.3 某些酶活相关基因等的过表达可提高耐铝性 | 第28-29页 |
| 1.1.6.4 筛选耐铝突变体 | 第29页 |
| 1.1.6.5 从分子育种角度 | 第29页 |
| 1.1.7 筛选耐铝毒植物的方法 | 第29-31页 |
| 1.1.8 铝毒害与细胞程序性死亡 | 第31-32页 |
| 1.2 杉木铝毒害研究进展 | 第32页 |
| 1.3 叶绿素荧光动力学技术在植物逆境中的研究进展 | 第32-34页 |
| 1.4 离子流研究进展 | 第34-36页 |
| 1.5 立题依据和研究意义 | 第36-39页 |
| 第二章 铝胁迫对杉木无性系地上、地下部分6种矿质元素吸收的影响 | 第39-79页 |
| 2.1 材料与方法 | 第39-43页 |
| 2.1.1 供试材料 | 第39页 |
| 2.1.2 仪器 | 第39页 |
| 2.1.3 试验方法 | 第39-41页 |
| 2.1.3.1 培养基的配制 | 第39页 |
| 2.1.3.2 溶液的配制 | 第39-41页 |
| 2.1.4 铝胁迫对杉木无性系地上、地下部分磷、钾、钙、镁、铝、铁含量的影响 | 第41页 |
| 2.1.5 应用全自动间断化学分析仪测定铝、铁含量的方法编制 | 第41-42页 |
| 2.1.5.1 方法原理 | 第41页 |
| 2.1.5.2 仪器操作步骤 | 第41-42页 |
| 2.1.6 数据分析 | 第42-43页 |
| 2.2 结果与分析 | 第43-74页 |
| 2.2.1 应用全自动间断化学分析仪测定铝含量的方法 | 第43-47页 |
| 2.2.1.1 吸收光谱 | 第43页 |
| 2.2.1.2 最佳实验条件选择 | 第43-45页 |
| 2.2.1.3 铝标准曲线的制备 | 第45页 |
| 2.2.1.4 准确度和精密度考察 | 第45-46页 |
| 2.2.1.5 加标回收率 | 第46-47页 |
| 2.2.2 应用全自动间断化学分析仪测定铁含量的方法 | 第47-51页 |
| 2.2.2.1 吸收光谱 | 第47-48页 |
| 2.2.2.2 最佳实验条件选择 | 第48-49页 |
| 2.2.2.3 铁标准曲线的制备 | 第49页 |
| 2.2.2.4 准确度和精密度考察 | 第49-50页 |
| 2.2.2.5 加标回收率 | 第50-51页 |
| 2.2.3 铝胁迫对杉木无性系地下、地上部分磷、钾、钙、镁、铝、铁含量的影响 | 第51-71页 |
| 2.2.3.1 铝胁迫对杉木无性系地下、地上部分磷含量的影响 | 第51-54页 |
| 2.2.3.2 铝胁迫对杉木无性系地下、地上部分钾含量的影响 | 第54-57页 |
| 2.2.3.3 铝胁迫对杉木无性系地下、地上部分钙含量的影响 | 第57-61页 |
| 2.2.3.4 铝胁迫对杉木无性系地下、地上部分镁含量的影响 | 第61-64页 |
| 2.2.3.5 铝胁迫对杉木无性系地下、地上部分铝含量的影响 | 第64-67页 |
| 2.2.3.6 铝胁迫对杉木无性系地下、地上部分铁含量的影响 | 第67-71页 |
| 2.2.4 铝胁迫对杉木无性系磷、钾、钙、镁、铝、铁含量的方差及极差分析 | 第71-74页 |
| 2.3 讨论 | 第74-77页 |
| 2.4 小结 | 第77-79页 |
| 第三章 铝胁迫对杉木叶绿素荧光特性的影响 | 第79-87页 |
| 3.1 材料与方法 | 第79页 |
| 3.1.1 供试材料 | 第79页 |
| 3.1.2 仪器 | 第79页 |
| 3.1.3 试验方法 | 第79页 |
| 3.1.3.1 培养基的配制 | 第79页 |
| 3.1.3.2 溶液的配制 | 第79页 |
| 3.1.4 数据分 | 第79页 |
| 3.2 结果与分析 | 第79-84页 |
| 3.2.1 铝胁迫对杉木无性系叶绿素荧光参数F_o的影响 | 第79-80页 |
| 3.2.2 铝胁迫对杉木无性系叶绿素荧光参数F_m的影响 | 第80-81页 |
| 3.2.3 铝胁迫对杉木无性系叶绿素荧光参数F_v的影响 | 第81-82页 |
| 3.2.4 铝胁迫对杉木无性系叶绿素荧光参数F_v/F_m的影响 | 第82-84页 |
| 3.3 讨论 | 第84-85页 |
| 3.4 小结 | 第85-87页 |
| 第四章 铝胁迫对杉木根系离子吸收过程的影响 | 第87-95页 |
| 4.1 材料与方法 | 第87-88页 |
| 4.1.1 供试材料 | 第87页 |
| 4.1.2 试验方法 | 第87页 |
| 4.1.2.1 培养基的配制 | 第87页 |
| 4.1.2.2 溶液的配制 | 第87页 |
| 4.1.2.3 苗木培养 | 第87页 |
| 4.1.3 仪器与试剂 | 第87页 |
| 4.1.4 非损伤微测技术测定杉木幼苗根系H~+、K~+、Ca~(2+)、Mg~(2+)净流 | 第87-88页 |
| 4.2 结果与分析 | 第88-92页 |
| 4.2.1 铝胁迫对杉木根系H~+流的影响 | 第88-89页 |
| 4.2.2 铝胁迫对杉木根系K~+流的影响 | 第89-90页 |
| 4.2.3 铝胁迫对杉木根系Ca~(2+)流的影响 | 第90-91页 |
| 4.2.4 铝胁迫对杉木根系Mg~(2+)流的影响 | 第91-92页 |
| 4.3 讨论 | 第92-94页 |
| 4.4 小结 | 第94-95页 |
| 第五章 杉木根系应答铝胁迫的转录组分析 | 第95-145页 |
| 5.1 材料与方法 | 第95-102页 |
| 5.1.1 杉木材料与铝胁迫处理方法 | 第95页 |
| 5.1.1.1 供试材料 | 第95页 |
| 5.1.1.2 仪器与试剂 | 第95页 |
| 5.1.1.3 材料培养 | 第95页 |
| 5.1.2 总RNA提取、cDNA文库构建及Illumina测序 | 第95-101页 |
| 5.1.2.1 总RNA提取 | 第95-96页 |
| 5.1.2.2 总RNA质量检测 | 第96-97页 |
| 5.1.2.3 文库构建和转录组测序 | 第97页 |
| 5.1.2.4 测序数据及质量控制 | 第97-98页 |
| 5.1.2.5 Unigene功能注释 | 第98-99页 |
| 5.1.2.6 基因结构分析 | 第99-100页 |
| 5.1.2.7 基因表达量分析 | 第100页 |
| 5.1.2.8 差异表达分析 | 第100-101页 |
| 5.1.3 实时荧光定量PCR验证 | 第101-102页 |
| 5.1.4 数据处理与分析 | 第102页 |
| 5.2 结果与分析 | 第102-140页 |
| 5.2.1 总RNA提取质量分析 | 第102-109页 |
| 5.2.2 测序数据统计与评估 | 第109-111页 |
| 5.2.2.1 测序碱基质量值 | 第109-110页 |
| 5.2.2.2 碱基分布检查 | 第110-111页 |
| 5.2.3 测序数据组装 | 第111-113页 |
| 5.2.4 转录组测序文库质量评估 | 第113-116页 |
| 5.2.4.1 mRNA片段化随机性检验 | 第114页 |
| 5.2.4.2 插入片段长度检验 | 第114-115页 |
| 5.2.4.3 转录组测序数据饱和度检验 | 第115-116页 |
| 5.2.5 Unigene的功能注释 | 第116页 |
| 5.2.6 基因结构分析 | 第116-121页 |
| 5.2.6.1 编码区序列预测 | 第116-118页 |
| 5.2.6.2 SNP分析 | 第118页 |
| 5.2.6.3 SSR分析 | 第118-121页 |
| 5.2.7 基因表达量分析 | 第121-122页 |
| 5.2.7.1 Unigene表达量分析 | 第121页 |
| 5.2.7.2 两个转录组样品基因表达量分析 | 第121-122页 |
| 5.2.8 差异表达分析 | 第122-139页 |
| 5.2.8.1 差异表达基因筛选 | 第122-124页 |
| 5.2.8.2 差异表达基因聚类分析 | 第124-126页 |
| 5.2.8.3 差异表达基因功能注释和富集分析 | 第126-139页 |
| 5.2.9 qPCR验证 | 第139-140页 |
| 5.3 讨论 | 第140-142页 |
| 5.4 小结 | 第142-145页 |
| 第六章 铝胁迫对杉木根中与铝、钙、磷元素吸收与运输相关的三个基因的表达分析 | 第145-151页 |
| 6.1 材料与方法 | 第145-146页 |
| 6.1.1 材料 | 第145页 |
| 6.1.2 总RNA的提取 | 第145页 |
| 6.1.3 反转录cDNA第一链的合成 | 第145页 |
| 6.1.4 铝胁迫对杉木根中与铝、钙、磷的吸收与利用相关的基因的表达分析 | 第145-146页 |
| 6.2 结果与分析 | 第146-148页 |
| 6.2.1 不同铝胁迫时间处理对杉木根中Cl-TSJT1基因的qPCR表达分析 | 第146-147页 |
| 6.2.2 不同铝胁迫时间处理对杉木根中ClCa-uptake1基因的qPCR表达分析 | 第147-148页 |
| 6.2.3 不同铝胁迫时间处理对杉木根中ClPt1基因的qPCR表达分析 | 第148页 |
| 6.3 讨论 | 第148-150页 |
| 6.3.1 铝胁迫对杉木根中Cl-TSJT1基因表达的影响 | 第148-149页 |
| 6.3.2 铝胁迫对杉木根中ClCa-uptake1基因表达的影响 | 第149页 |
| 6.3.3 铝胁迫对杉木根中ClPt1基因表达的影响 | 第149-150页 |
| 6.4 小结 | 第150-151页 |
| 第七章 铝胁迫对杉木根中与元素参与调控相关的差异表达基因的影响 | 第151-165页 |
| 7.1 杉木根中与元素参与调控相关的差异表达基因的影响 | 第151-162页 |
| 7.1.1 杉木根中与磷元素参与调控相关的差异表达基因的影响 | 第151-152页 |
| 7.1.2 杉木根中与钾元素参与调控相关的差异表达基因的影响 | 第152-154页 |
| 7.1.3 杉木根中与钙元素参与调控相关的差异表达基因的影响 | 第154-156页 |
| 7.1.4 杉木根中与镁元素参与调控相关的差异表达基因的影响 | 第156-158页 |
| 7.1.5 杉木根中与铝元素参与调控相关的差异表达基因的影响 | 第158-160页 |
| 7.1.6 杉木根中与铁元素参与调控相关的差异表达基因的影响 | 第160-162页 |
| 7.2 讨论 | 第162-164页 |
| 7.3 小结 | 第164-165页 |
| 第八章 结论与展望 | 第165-169页 |
| 8.1 结论 | 第165-166页 |
| 8.2 创新点 | 第166-167页 |
| 8.3 展望 | 第167-169页 |
| 参考文献 | 第169-191页 |
| 附录 | 第191-207页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文及其他成果 | 第207-209页 |
| 致谢 | 第209页 |
