| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 研究现状、成果 | 第15-17页 |
| 研究目的、方法 | 第17-18页 |
| 一、表皮干细胞的分离、培养与鉴定 | 第18-26页 |
| 1.1 对象和方法 | 第18-22页 |
| 1.1.1 实验试剂 | 第18页 |
| 1.1.2 实验仪器 | 第18-19页 |
| 1.1.3 试剂配制 | 第19-20页 |
| 1.1.4 细胞的分离培养 | 第20-21页 |
| 1.1.5 表皮干细胞的免疫荧光 | 第21-22页 |
| 1.2 结果 | 第22-23页 |
| 1.2.1 表皮干细胞的形态学特点 | 第22页 |
| 1.2.2 表皮干细胞的免疫荧光 | 第22-23页 |
| 1.3 讨论 | 第23-25页 |
| 1.4 小结 | 第25-26页 |
| 二、过表达CCND1诱导成熟表皮细胞去分化为表皮干细胞 | 第26-53页 |
| 2.1 对象和方法 | 第26-45页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第26-27页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第27-28页 |
| 2.1.3 实验试剂配制 | 第28-31页 |
| 2.1.4 构建表达质粒 | 第31-37页 |
| 2.1.5 表达质粒的转染表皮细胞 | 第37-39页 |
| 2.1.6 用细胞免疫荧光技术分别检测三组细胞的免疫表型 | 第39-40页 |
| 2.1.7 用 RT-PCR 技术分别检测三组细胞 CK19，β1，CK10 在 mRNA 水平上的表达变化 | 第40-42页 |
| 2.1.8 用 Western Blot 技术分别检测各组细胞 CK19，β1，CK10 在蛋白表达水平上的变化情况 | 第42-45页 |
| 2.1.9 统计学分析 | 第45页 |
| 2.2 结果 | 第45-50页 |
| 2.2.1 表达质粒的合成 | 第45-47页 |
| 2.2.2 转染后各组细胞增殖情况 | 第47页 |
| 2.2.3 细胞周期蛋白D1诱导去分化后表皮细胞形态变化 | 第47-48页 |
| 2.2.4 质粒转染成熟表皮细胞的效率 | 第48页 |
| 2.2.5 各组细胞β1、CK19和CK10的荧光表达情况 | 第48-49页 |
| 2.2.6 各组细胞β1、CK19和CK10的在mRNA水平上的表达变化 | 第49-50页 |
| 2.2.7 各组细胞的β1、CK19和CK10在蛋白表达水平的变化 | 第50页 |
| 2.3 讨论 | 第50-52页 |
| 2.4 小结 | 第52-53页 |
| 三、过表达CCND1诱导后的表皮细胞对裸鼠皮肤创面修复的促进作用 | 第53-63页 |
| 3.1 对象和方法 | 第53-57页 |
| 3.1.1 实验对象 | 第53页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第53页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第53-54页 |
| 3.1.4 实验试剂配制 | 第54-55页 |
| 3.1.5 制作裸鼠的创面缺损 | 第55-56页 |
| 3.1.6 将各组细胞移植到裸鼠创面 | 第56页 |
| 3.1.7 裸鼠创面的切片的免疫荧光 | 第56-57页 |
| 3.1.8 统计学分析 | 第57页 |
| 3.2 结果 | 第57-61页 |
| 3.2.1 观察移植细胞后各组裸鼠创面的恢复情况 | 第57-59页 |
| 3.2.2 各组裸鼠创面面积变化 | 第59-60页 |
| 3.2.3 裸鼠创面中表皮干细胞的追踪 | 第60-61页 |
| 3.3 讨论 | 第61-62页 |
| 3.4 小结 | 第62-63页 |
| 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-68页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第68-69页 |
| 附录 | 第69-71页 |
| 综述 | 第71-76页 |
| 综述参考文献 | 第74-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 个人简历 | 第77页 |
