| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 前言 | 第13-23页 |
| 1.1 影响龙眼采后果皮褐变的因素 | 第13-15页 |
| 1.1.1 组织衰老 | 第13-14页 |
| 1.1.2 果皮失水 | 第14页 |
| 1.1.3 低温冷害 | 第14页 |
| 1.1.4 高CO_2伤害 | 第14页 |
| 1.1.5 机械损伤 | 第14-15页 |
| 1.1.6 病原微生物侵染 | 第15页 |
| 1.1.7 其他因素 | 第15页 |
| 1.2 硫处理技术在龙眼采后中的应用 | 第15-18页 |
| 1.2.1 硫处理对龙眼果实呼吸的抑制作用 | 第16页 |
| 1.2.2 硫处理对龙眼果皮褐变相关酶类物质的影响 | 第16-17页 |
| 1.2.3 硫处理对龙眼果实采后病原菌的抑制作用 | 第17页 |
| 1.2.4 硫处理在龙眼果实应用中的不足之处 | 第17-18页 |
| 1.3 硫代谢与脱硫技术 | 第18-19页 |
| 1.4 脂氧合酶（LOX）与果皮酶促褐变 | 第19-21页 |
| 1.4.1 果皮酶促褐变 | 第19页 |
| 1.4.2 脂氧合酶与果皮酶促褐变 | 第19-21页 |
| 1.5 转录组学应用 | 第21-22页 |
| 1.5.1 转录组技术简介 | 第21页 |
| 1.5.2 转录组学研究的主要技术方法 | 第21页 |
| 1.5.3 转录组学在果蔬采后衰老过程中的应用进展 | 第21-22页 |
| 1.6 研究目的和意义 | 第22-23页 |
| 2 脱硫剂的筛选及对龙眼贮藏生理的影响 | 第23-44页 |
| 2.1 材料 | 第23-25页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第23页 |
| 2.1.2 材料处理 | 第23-25页 |
| 2.1.3 取样方式 | 第25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-31页 |
| 2.2.1 外果皮色度测定 | 第25页 |
| 2.2.2 内果皮褐变指数的评定 | 第25页 |
| 2.2.3 呼吸强度的测定 | 第25-26页 |
| 2.2.4 果肉可溶性固形物（TSS）含量的测定 | 第26页 |
| 2.2.5 果皮相对电导率测定 | 第26页 |
| 2.2.6 果皮MDA含量的测定 | 第26页 |
| 2.2.7 果皮PPO活性的测定 | 第26-27页 |
| 2.2.8 果皮多酚氧化酶（Dl PPO）相对表达量的测定 | 第27-30页 |
| 2.2.9 龙眼果实亚硫酸盐含量的测定 | 第30页 |
| 2.2.10 果实亚硫酸盐氧化酶（SO）活性的测定 | 第30-31页 |
| 2.2.11 果皮亚硫酸盐氧化酶（Dl SO）相对表达量的测定 | 第31页 |
| 2.2.12 数据处理 | 第31页 |
| 2.3 结果 | 第31-41页 |
| 2.3.1 不同脱硫材料对熏硫龙眼脱硫效果影响 | 第31-33页 |
| 2.3.2 熏硫及脱硫处理对龙眼内果皮褐变指数的影响 | 第33页 |
| 2.3.3 熏硫及脱硫处理对龙眼外果皮颜色的影响 | 第33-34页 |
| 2.3.4 熏硫及脱硫处理对龙眼呼吸强度的影响 | 第34-35页 |
| 2.3.5 熏硫及脱硫处理对龙眼果肉TSS含量的影响 | 第35-36页 |
| 2.3.6 熏硫及脱硫处理对龙眼果皮相对电导率的影响 | 第36页 |
| 2.3.7 熏硫及脱硫处理对龙眼果皮MDA含量的影响 | 第36-37页 |
| 2.3.8 熏硫及脱硫处理对龙眼果皮PPO活性的影响 | 第37-38页 |
| 2.3.9 熏硫及脱硫处理对龙眼果皮Dl PPO相对表达量的影响 | 第38页 |
| 2.3.10 熏硫及脱硫处理对龙眼亚硫酸盐含量的影响 | 第38-39页 |
| 2.3.11 熏硫及脱硫处理对龙眼SO活性的影响 | 第39-40页 |
| 2.3.12 熏硫及脱硫处理对龙眼果皮Dl SO相对表达量的影响 | 第40-41页 |
| 2.4 讨论与结论 | 第41-44页 |
| 2.4.1 不同脱硫材料对熏硫龙眼脱硫效果的影响 | 第41页 |
| 2.4.2 熏硫及脱硫处理对龙眼贮藏生理的影响 | 第41-43页 |
| 2.4.3 熏硫及脱硫处理对龙眼脱硫效果的影响 | 第43-44页 |
| 3 硫处理龙眼果皮转录组分析 | 第44-65页 |
| 3.1 材料与试剂 | 第44-45页 |
| 3.1.1 供试材料 | 第44页 |
| 3.1.2 材料处理与取样方法 | 第44页 |
| 3.1.3 实验试剂 | 第44-45页 |
| 3.2 实验方法 | 第45-48页 |
| 3.2.1 龙眼果实总RNA的提取、纯化及质量检测 | 第45页 |
| 3.2.2 测序文库制备 | 第45页 |
| 3.2.3 Illumina测序 | 第45页 |
| 3.2.4 测序数据处理 | 第45-47页 |
| 3.2.5 表达差异基因筛选 | 第47页 |
| 3.2.6 Illumina测序结果的q PCR验证 | 第47页 |
| 3.2.7 样品间差异表达基因GO功能显著性富集分析 | 第47-48页 |
| 3.2.8 样品间差异表达基因Pathway显著性富集分析 | 第48页 |
| 3.3 结果 | 第48-62页 |
| 3.3.1 龙眼总RNA的检测 | 第48-49页 |
| 3.3.2 测序产量的统计及评价 | 第49-50页 |
| 3.3.3 组装结果统计 | 第50-51页 |
| 3.3.4 Unigene基本注释 | 第51页 |
| 3.3.5 差异表达基因筛选 | 第51-52页 |
| 3.3.6 差异基因q PCR验证 | 第52页 |
| 3.3.7 差异表达基因的GO功能分类 | 第52-57页 |
| 3.3.8 差异表达基因的KEGG代谢通路分析 | 第57-62页 |
| 3.4 讨论与结论 | 第62-65页 |
| 4 脂氧合酶与龙眼果皮衰老褐变的关系 | 第65-76页 |
| 4.1 材料 | 第65-66页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第65页 |
| 4.1.2 材料处理 | 第65页 |
| 4.1.3 取样方法 | 第65页 |
| 4.1.4 引物设计及合成 | 第65-66页 |
| 4.2 实验方法 | 第66-69页 |
| 4.2.1 龙眼果实LOX基因片段克隆 | 第66-69页 |
| 4.2.2 龙眼果实Dl LOX生物信息学分析 | 第69页 |
| 4.2.3 果皮脂氧合酶（LOX）活性的测定 | 第69页 |
| 4.2.4 果皮脂氧合酶（Dl LOX）相对表达量的测定 | 第69页 |
| 4.3 结果 | 第69-74页 |
| 4.3.1 脂氧合酶（LOX）基因克隆 | 第69-70页 |
| 4.3.2 Dl LOX的及其编码蛋白的生物信息学分析 | 第70-73页 |
| 4.3.3 龙眼采后衰老过程中脂氧合酶（LOX）活性的变化 | 第73页 |
| 4.3.4 龙眼采后衰老过程中脂氧合酶（Dl LOX）相对表达量的变化 | 第73-74页 |
| 4.4 讨论与结论 | 第74-76页 |
| 5 总结与展望 | 第76-78页 |
| 5.1 总结 | 第76-77页 |
| 5.2 展望 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-89页 |
| 附录 | 第89-90页 |
