| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略表 | 第10-11页 |
| 引言 | 第11-13页 |
| 第1章 实验研究 | 第13-38页 |
| 1.1 材料与方法 | 第13-19页 |
| 1.1.1 材料 | 第13-14页 |
| 1.1.2 实验方法与步骤 | 第14-19页 |
| 1.1.3 统计学方法 | 第19页 |
| 1.2 结果 | 第19-24页 |
| 1.2.1 各组大鼠水迷宫检测结果 | 第19-20页 |
| 1.2.2 各组大鼠海马区HE染色结果 | 第20-21页 |
| 1.2.3 各组大鼠海马区Cyclin D1免疫组化和Western blotting结果 | 第21-22页 |
| 1.2.4 各组大鼠海马区CDK4免疫组化和Western blotting结果 | 第22页 |
| 1.2.5 各组大鼠海马区Notch1免疫组化和Western blotting结果 | 第22-24页 |
| 1.3 讨论 | 第24-30页 |
| 1.3.1 缺血后处理对全脑缺血大鼠细胞周期蛋白的影响 | 第25-28页 |
| 1.3.2 缺血后处理对全脑缺血大鼠Notch1活性的影响 | 第28-30页 |
| 1.4 小结 | 第30-31页 |
| 参考文献 | 第31-38页 |
| 第2章 综述 缺血后处理对脑缺血的保护作用 | 第38-47页 |
| 2.1缺血后处理保护作用 | 第39页 |
| 2.2 缺血后处理保护机制 | 第39-43页 |
| 2.2.1 减轻过氧化损伤和钙离子超载 | 第39-40页 |
| 2.2.2 减轻炎性反应 | 第40页 |
| 2.2.3 内源性保护物质 | 第40-41页 |
| 2.2.4 信号转导通路 | 第41-42页 |
| 2.2.5 KATP通路 | 第42-43页 |
| 2.3 缺血后处理衍生处理 | 第43页 |
| 2.4 展望 | 第43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 附录 | 第48-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 导师简介 | 第60-61页 |
| 作者简介 | 第61-62页 |
| 学位论文数据集 | 第62页 |
