| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 前言 | 第11-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-20页 |
| 1.1 悬钩子属植物及黑果悬钩子的研究现状 | 第12-15页 |
| 1.1.1 化学成分的研究进展 | 第12-14页 |
| 1.1.2 生物活性的研究进展 | 第14-15页 |
| 1.2 抗衰老及抗氧化药物的研究现状 | 第15-17页 |
| 1.2.1 抗衰老生物氧化机制 | 第15-16页 |
| 1.2.2 抗氧化药物的研究现状 | 第16-17页 |
| 1.3 糖尿病及降血糖药物的研究现状 | 第17-19页 |
| 1.3.1 糖尿病的发病机制 | 第17-18页 |
| 1.3.2 降血糖药物的研究现状 | 第18-19页 |
| 1.4 研究黑果悬钩子化学成分的目的和意义 | 第19-20页 |
| 第二章 黑果悬钩子茎叶总黄酮含量测定和生物活性筛选 | 第20-29页 |
| 2.1 材料与设备 | 第20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-24页 |
| 2.2.1 黑果悬钩子茎和叶活性部位的制备 | 第20-21页 |
| 2.2.3 抗氧化活性测定 | 第21-22页 |
| 2.2.4 蛋白酪氨酸磷酸酶 1B（PTP1B）抑制活性的筛选 | 第22页 |
| 2.2.5 3T3-L1前脂肪细胞抑制活性筛选（MTT法） | 第22-24页 |
| 2.3 结果和讨论 | 第24-29页 |
| 2.3.1 黑果悬钩子茎和叶不同提取部位的抗氧化活性 | 第24-25页 |
| 2.3.2 黑果悬钩子茎和叶不同提取部位对PTP1B的抑制作用 | 第25页 |
| 2.3.3 黑果悬钩子茎和叶不同提取部位对 3T3-L1前脂肪细胞的抑制作用 | 第25-29页 |
| 第三章 黑果悬钩子茎和叶总黄酮总多酚提取纯化工艺优化 | 第29-44页 |
| 3.1 材料与设备 | 第29页 |
| 3.2 实验方法 | 第29-33页 |
| 3.2.1 材料处理 | 第29页 |
| 3.2.2 黄酮含量的测定 | 第29-30页 |
| 3.2.3 福林酚显色法测定多酚显色条件的确定 | 第30页 |
| 3.2.4 多酚含量的测定 | 第30-31页 |
| 3.2.5 抗氧化活性的测定 | 第31页 |
| 3.2.6 黑果悬钩子叶和茎总黄酮、多酚提取的优化试验 | 第31页 |
| 3.2.7 黑果悬钩子叶和茎总黄酮的纯化工艺优化 | 第31-33页 |
| 3.2.8 统计分析 | 第33页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第33-44页 |
| 3.3.1 芦丁标准曲线的测定 | 第33页 |
| 3.3.2 多酚标准曲线测定 | 第33-34页 |
| 3.3.3 DPPH标准曲线测定 | 第34页 |
| 3.3.4 ABTS标准曲线测定 | 第34-35页 |
| 3.3.5 福林酚显色法测定多酚显色条件的选择 | 第35-36页 |
| 3.3.6 黑果悬钩子叶和茎总黄酮、多酚提取和抗氧化活性的优化 | 第36-39页 |
| 3.3.7 黑果悬钩子叶和茎总黄酮、多酚提取率和抗氧化活性的比较 | 第39页 |
| 3.3.8 黑果悬钩子叶和茎总黄酮纯化工艺优化 | 第39-42页 |
| 3.3.9 AB-8 树脂对黑果悬钩子茎和叶黄酮的纯化效果 | 第42-44页 |
| 第四章 黑果悬钩子茎叶乙酸乙酯部位化学成分分离和结构鉴定 | 第44-50页 |
| 4.1 材料与设备 | 第44页 |
| 4.2 实验方法 | 第44-46页 |
| 4.2.1 黑果悬钩子茎乙酸乙酯部位的分离纯化 | 第44-45页 |
| 4.2.2 黑果悬钩子叶乙酸乙酯部位的分离纯化 | 第45-46页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第46-50页 |
| 4.3.1 黑果悬钩子茎乙酸乙酯部位的化学成分 | 第46-48页 |
| 4.3.2 黑果悬钩子叶乙酸乙酯部位的化学成分 | 第48-50页 |
| 第五章 结论与展望 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-59页 |
| 附录 | 第59-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 作者简介 | 第70-71页 |
| 附表 | 第71页 |
