| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 第一章 绪论 | 第15-58页 |
| 1.1 引言 | 第15页 |
| 1.2 纳米材料及其生物应用 | 第15-22页 |
| 1.2.1 非金属单质纳米材料 | 第15-18页 |
| 1.2.2 非金属氧化物纳米材料 | 第18-19页 |
| 1.2.3 金属单质纳米材料 | 第19-21页 |
| 1.2.4 金属氧化物纳米材料 | 第21页 |
| 1.2.5 纳米复合材料 | 第21-22页 |
| 1.3 生物酶及其固载方法 | 第22-25页 |
| 1.3.1 吸附法 | 第23页 |
| 1.3.2 包埋法 | 第23-24页 |
| 1.3.3 共价键结合法 | 第24页 |
| 1.3.4 自组装法 | 第24-25页 |
| 1.4 微纳米限域空间中生物酶的催化性能 | 第25-28页 |
| 1.5 多酶复合物及其组装 | 第28-32页 |
| 1.6 细胞色素P450酶及其体外模拟代谢 | 第32-40页 |
| 1.6.1 细胞色素P450酶系的结构及其催化循环 | 第33-35页 |
| 1.6.2 细胞色素P450酶在电极表面的直接电化学及催化性能 | 第35-38页 |
| 1.6.3 光电化学驱动下的细胞色素P450酶的催化性能 | 第38-40页 |
| 1.7 本论文的主要研究内容 | 第40-43页 |
| 参考文献 | 第43-58页 |
| 第二章 石墨烯纳米笼代谢区室构建及其药物代谢研究 | 第58-80页 |
| 2.1 引言 | 第58-60页 |
| 2.2 实验部分 | 第60-63页 |
| 2.2.1 试剂及材料 | 第60页 |
| 2.2.2 仪器 | 第60-61页 |
| 2.2.3 石墨烯/壳聚糖纳米复合膜(GR/CS)的合成 | 第61页 |
| 2.2.4 GR/CS纳米膜上共价组装CYP1A2和UGT1A10 | 第61-63页 |
| 2.2.5 利用点击化学反应在石墨烯纳米笼中构建CYP1A2/UGT1A10双酶复合物 | 第63页 |
| 2.2.6 Bradford法测定石墨烯复合膜上酶的负载量 | 第63页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第63-74页 |
| 2.3.1 GR/CS复合纳米膜表征 | 第63-65页 |
| 2.3.2 石墨烯纳米笼中双酶复合物构建以及酶间距的可控性调节 | 第65-67页 |
| 2.3.3 组装在石墨烯纳米笼中酶的电化学性能 | 第67-70页 |
| 2.3.4 石墨烯纳米笼中酶复合物的电催化特征 | 第70-72页 |
| 2.3.5 环丙沙星对纳米笼中酶复合物代谢华法林的抑制效应 | 第72页 |
| 2.3.6 LC-MS/MS验证华法林级联代谢过程 | 第72-74页 |
| 2.3.7 石墨烯纳米笼用来构建双酶复合物的必要性验证 | 第74页 |
| 2.4 本章小结 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-80页 |
| 第三章 金纳米粒子/壳聚糖/石墨烯复合膜上双酶共组装及其药物级联代谢研究 | 第80-96页 |
| 3.1 引言 | 第80页 |
| 3.2 实验部分 | 第80-83页 |
| 3.2.1 主要试剂和材料 | 第80-81页 |
| 3.2.2 主要仪器设备 | 第81页 |
| 3.2.3 金纳米功能化的壳聚糖/石墨烯纳米复合膜的制备(Au/CS/GR) | 第81-82页 |
| 3.2.4 Au/CS/GR纳米复合膜上CYP450双酶复合物的组装 | 第82页 |
| 3.2.5 Bradford光度法测定Au/CS/GR复合膜上CYP1A2或CYP3A4酶的量 | 第82-83页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第83-91页 |
| 3.3.1 Au/CS/GR纳米复合膜上CYP1A2和CYP3A4的依次组装 | 第83-85页 |
| 3.3.2 电化学驱动Au/CS/GR上CYP450双酶复合物对底物的级联代谢 | 第85-90页 |
| 3.3.3 LC-MS/MS法验证氯吡格雷的级联代谢过程 | 第90-91页 |
| 3.4 本章小结 | 第91-93页 |
| 参考文献 | 第93-96页 |
| 第四章 基于受限在TiO_2纳米管阵列中细胞色素P450酶的电化学驱动药物代谢研究 | 第96-114页 |
| 4.1 引言 | 第96-97页 |
| 4.2 实验部分 | 第97-99页 |
| 4.2.1 主要试剂和材料 | 第97页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第97-98页 |
| 4.2.3 TiO_2纳米管阵列的制备 | 第98-99页 |
| 4.2.4 TNA管内壁Au纳米粒子原位电沉积及CYP2C9酶的组装 | 第99页 |
| 4.2.5 Bradford光度法测定组装于TNA管内的CYP2C9的量 | 第99页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第99-109页 |
| 4.3.1 TiO_2纳米管阵列酶反应器的构建 | 第99-103页 |
| 4.3.2 不同尺寸的TNA中组装的CYP2C9的电催化性能研究 | 第103-107页 |
| 4.3.3 LC-MS/MS验证CYP/Au/TNA酶反应器中甲苯磺丁脲的代谢过程 | 第107-109页 |
| 4.4 本章小结 | 第109-110页 |
| 参考文献 | 第110-114页 |
| 第五章 基于受限在有序大孔二氧化硅泡沫中石墨烯/酞菁/细胞色素P450酶的光驱动药物代谢研究 | 第114-133页 |
| 5.1 引言 | 第114-115页 |
| 5.2 实验部分 | 第115-117页 |
| 5.2.1 材料及试剂 | 第115-116页 |
| 5.2.2 仪器 | 第116页 |
| 5.2.3 CYP3A4/CoTAPc/RGO/MOSF的制备 | 第116页 |
| 5.2.4 经由CYP3A4/CoTAPc/RGO/MOSF光电驱动代谢7-EFC | 第116-117页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第117-126页 |
| 5.3.1 CoTAPc和CoTAPc/RGO的制备及光化学性能研究 | 第117-119页 |
| 5.3.2 ITO玻璃电极上CYP3A4/CoTAPc/RGO光驱动酶催化性能研究 | 第119-120页 |
| 5.3.3 MOSF制备及CYP3A4/CoTAPc/RGO的负载研究 | 第120-122页 |
| 5.3.4 光驱动下CYP3A4/CoTAPc/RGO/MOSF催化底物代谢研究 | 第122-123页 |
| 5.3.5 MOSF孔径大小对CYP3A4/CoTAPc/RGO催化性能的影响 | 第123-126页 |
| 5.3.6 质谱法验证7-EFC的代谢情况以及CYP3A4/CoTAPc/RGO/MOSF的重复使用性 | 第126页 |
| 5.4 本章总结 | 第126-129页 |
| 参考文献 | 第129-133页 |
| 第六章 微囊藻毒素-LR流动注射-化学发光免疫分析法检测 | 第133-150页 |
| 6.1 引言 | 第133-134页 |
| 6.2 实验部分 | 第134-137页 |
| 6.2.1 材料及试剂 | 第134-135页 |
| 6.2.2 主要仪器 | 第135页 |
| 6.2.3 MB/PEI/Ab1的制备 | 第135页 |
| 6.2.4 MC-LR抗体和HRP共固定的SiO_2纳米粒子的制各(Si/Ab2) | 第135-136页 |
| 6.2.5 流动注射化学发光免疫法(FI-CL)的建立 | 第136-137页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第137-145页 |
| 6.3.1 MB/PEI的性能表征 | 第137-138页 |
| 6.3.2 Si/Ab2信号探针用于信号放大 | 第138-140页 |
| 6.3.3 检测实验条件的优化 | 第140-142页 |
| 6.3.4 流动注射-夹心免疫化学发光法测定MC-LR | 第142-143页 |
| 6.3.5 实际水样中MC-LR含量分析 | 第143-144页 |
| 6.3.6 MB/PEI/Ab1的再生和稳定性 | 第144-145页 |
| 6.4 本章小结 | 第145-146页 |
| 参考文献 | 第146-150页 |
| 第七章 总结与展望 | 第150-153页 |
| 7.1 总结 | 第150页 |
| 7.2 本论文的创新之处 | 第150-151页 |
| 7.3 本论文的后续工作与展望 | 第151-153页 |
| 博士期间发表的论文 | 第153-155页 |
| 致谢 | 第155页 |
