摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
第一章 绪论 | 第13-32页 |
1.1 龙须菜概述 | 第13页 |
1.2 龙须菜多糖研究概况 | 第13-15页 |
1.2.1 龙须菜多糖的提取方法及理化性质 | 第13-14页 |
1.2.2 龙须菜多糖的生物活性 | 第14-15页 |
1.3 多糖的结构-效应关系研究 | 第15-20页 |
1.3.1 一级结构与生物活性关系 | 第16-17页 |
1.3.2 高级结构与生物活性关系 | 第17页 |
1.3.3 多糖理化性质与生物活性关系 | 第17-18页 |
1.3.4 活性部位 | 第18-20页 |
1.4 糖尿病概述 | 第20-23页 |
1.4.1 糖尿病简介 | 第20页 |
1.4.2 多糖降血糖机制概述 | 第20-23页 |
1.5 本课题的研究意义及主要内容 | 第23-25页 |
1.5.1 研究背景及意义 | 第23页 |
1.5.2 主要研究内容 | 第23-25页 |
参考文献 | 第25-32页 |
第二章 不同提取方法对龙须菜多糖性质的影响 | 第32-50页 |
2.1 前言 | 第32页 |
2.2 材料与方法 | 第32-38页 |
2.2.1 材料 | 第32页 |
2.2.2 主要试剂 | 第32-33页 |
2.2.3 主要仪器 | 第33-34页 |
2.2.4 实验方法 | 第34-38页 |
2.3 结果与讨论 | 第38-47页 |
2.3.1 不同提取方法的龙须菜多糖得率 | 第38-39页 |
2.3.2 不同方法提取龙须菜多糖的粘度和分子量分布比较 | 第39-40页 |
2.3.3 不同方法提取龙须菜多糖的单糖组成 | 第40-41页 |
2.3.4 不同方法提取龙须菜多糖的糖醛酸和硫酸根含量比较 | 第41-42页 |
2.3.5 不同方法提取龙须菜多糖的抗氧化性比较 | 第42-44页 |
2.3.6 不同方法提取龙须菜多糖的α-淀粉酶抑制活性比较 | 第44-46页 |
2.3.7 龙须菜多糖物化性质与活性之间的相关性分析 | 第46-47页 |
2.4 本章小结 | 第47-48页 |
参考文献 | 第48-50页 |
第三章 龙须菜多糖体内降血糖作用评价 | 第50-64页 |
3.1 前言 | 第50页 |
3.2 材料与方法 | 第50-52页 |
3.2.1 材料 | 第50页 |
3.2.2 主要试剂 | 第50-51页 |
3.2.3 主要仪器 | 第51页 |
3.2.4 糖尿病小鼠模型的建立 | 第51页 |
3.2.5 实验分组及给药 | 第51-52页 |
3.2.6 指标测定及方法 | 第52页 |
3.2.7 数据处理与分析 | 第52页 |
3.3 结果与分析 | 第52-59页 |
3.3.1 小鼠一般情况观察 | 第52-53页 |
3.3.2 龙须菜多糖对糖尿病小鼠饮食量和排尿量的影响 | 第53-54页 |
3.3.3 龙须菜多糖对糖尿病小鼠体重的影响 | 第54-55页 |
3.3.4 龙须菜多糖对糖尿病小鼠空腹血糖的影响 | 第55-56页 |
3.3.5 龙须菜多糖对糖尿病小鼠葡萄糖耐量的影响 | 第56-58页 |
3.3.6 龙须菜多糖对糖尿病小鼠脏器指数的影响 | 第58-59页 |
3.4 讨论 | 第59-61页 |
3.5 本章小结 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-64页 |
第四章 龙须菜多糖对糖尿病小鼠糖脂代谢的影响 | 第64-82页 |
4.1 前言 | 第64页 |
4.2 材料和方法 | 第64-68页 |
4.2.1 材料 | 第64-65页 |
4.2.2 主要试剂 | 第65页 |
4.2.3 主要仪器 | 第65页 |
4.2.4 糖尿病小鼠模型的建立 | 第65页 |
4.2.5 实验分组及给药 | 第65页 |
4.2.6 指标的测定及方法 | 第65-68页 |
4.2.7 数据处理与分析 | 第68页 |
4.3 结果与分析 | 第68-75页 |
4.3.1 龙须糖多糖对糖尿病小鼠血脂的影响 | 第68-70页 |
4.3.2 龙须菜多糖对糖尿病小鼠糖代谢的影响 | 第70-75页 |
4.4 讨论 | 第75-79页 |
4.4.1 龙须菜多糖对糖尿病小鼠脂代谢的影响 | 第75-77页 |
4.4.2 龙须菜多糖对糖尿病小鼠糖代谢的影响 | 第77-79页 |
4.5 本章小结 | 第79-80页 |
参考文献 | 第80-82页 |
第五章 龙须菜多糖对糖尿病小鼠体内氧化应激的影响 | 第82-99页 |
5.1 前言 | 第82页 |
5.2 材料与方法 | 第82-86页 |
5.2.1 材料 | 第82页 |
5.2.2 主要试剂 | 第82-83页 |
5.2.3 主要仪器 | 第83页 |
5.2.4 糖尿病小鼠模型的建立 | 第83页 |
5.2.5 实验分组及给药 | 第83页 |
5.2.6 指标的测定及方法 | 第83-85页 |
5.2.7 数据处理与分析 | 第85-86页 |
5.3 结果与分析 | 第86-93页 |
5.3.1 龙须菜多糖对糖尿病小鼠体内抗氧化的影响 | 第86-90页 |
5.3.2 龙须菜多糖对糖尿病小鼠肝肾功能的影响 | 第90-93页 |
5.4 讨论 | 第93-95页 |
5.5 本章小结 | 第95-96页 |
参考文献 | 第96-99页 |
第六章 龙须菜多糖的分离纯化、结构鉴定及抗氧化和降血糖活性 | 第99-121页 |
6.1 前言 | 第99页 |
6.2 实验材料与设备 | 第99-100页 |
6.2.1 验材料与试剂 | 第99-100页 |
6.2.2 实验仪器与设备 | 第100页 |
6.3 实验方法 | 第100-103页 |
6.3.1 龙须菜粗多糖的制备 | 第100-101页 |
6.3.2 龙须菜多糖的分离纯化 | 第101页 |
6.3.3 理化性质及组成分析 | 第101-102页 |
6.3.4 红外光谱测定[7] | 第102页 |
6.3.5 抗氧化活性测定 | 第102-103页 |
6.3.6 龙须菜多糖对胰岛素抵抗HepG2细胞葡萄糖吸收量的影响 | 第103页 |
6.3.7 数据处理与分析 | 第103页 |
6.4 实验结果与讨论 | 第103-117页 |
6.4.1 龙须菜多糖的分离纯化 | 第103-105页 |
6.4.2 龙须菜多糖各组分理化性质 | 第105-114页 |
6.4.3 龙须菜多糖各组分抗氧化活性比较 | 第114-115页 |
6.4.4 龙须菜多糖各组分对胰岛素抵抗HepG2(IR-HepG2)细胞葡萄糖吸收的影响 | 第115-117页 |
6.5 本章小结 | 第117-119页 |
参考文献 | 第119-121页 |
结论与展望 | 第121-123页 |
结论 | 第121-122页 |
创新点 | 第122页 |
展望 | 第122-123页 |
攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第123-124页 |
致谢 | 第124-125页 |
附件 | 第125页 |