| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 引言 | 第10-14页 |
| 第一章 草鱼雌核发育后代不同群体的微卫星遗传分析及指纹识别 | 第14-26页 |
| 1.1 实验材料 | 第14-15页 |
| 1.1.1 实验样品采集 | 第14页 |
| 1.1.2 实验仪器 | 第14-15页 |
| 1.1.3 实验试剂 | 第15页 |
| 1.2 实验方法 | 第15-17页 |
| 1.2.1 草鱼F2代减数雌核发育个体的诱导 | 第15页 |
| 1.2.2 雌核发育后代的倍性检测 | 第15页 |
| 1.2.3 微卫星引物筛选 | 第15-16页 |
| 1.2.4 基因组DNA制备 | 第16-17页 |
| 1.2.5 PCR反应体系与扩增程序 | 第17页 |
| 1.2.6 PCR产物凝胶电泳检测 | 第17页 |
| 1.2.7 数据统计与分析 | 第17页 |
| 1.3 结果 | 第17-23页 |
| 1.3.1 草鱼雌核发育后代不同群体的倍性检测 | 第17-19页 |
| 1.3.2 草鱼雌核发育后代不同群体的微卫星多态性 | 第19页 |
| 1.3.3 草鱼雌核发育后代不同群体的SSR遗传多样性分析 | 第19-22页 |
| 1.3.4 草鱼雌核发育后代不同群体的微卫星鉴别 | 第22-23页 |
| 1.4 讨论 | 第23-26页 |
| 1.4.1 草鱼雌核发育后代不同群体的遗传多样性分析 | 第23-24页 |
| 1.4.2 对高体型子代群体的分析 | 第24-25页 |
| 1.4.3 草鱼群体DNA指纹图谱 | 第25-26页 |
| 第二章 ENU诱变草鱼与雌核发育ENU诱变草鱼的微卫星遗传分析 | 第26-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第26-27页 |
| 2.1.1 实验样品采集 | 第26页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第26-27页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-29页 |
| 2.2.1 ENU诱变草鱼雌核发育个体的倍性检测 | 第27页 |
| 2.2.2 基因组DNA制备 | 第27页 |
| 2.2.3 PCR扩增及电泳检测 | 第27-29页 |
| 2.2.4 数据统计与分析 | 第29页 |
| 2.3 结果 | 第29-32页 |
| 2.3.1 雌核发育ENU诱变草鱼个体的倍性检测 | 第29-30页 |
| 2.3.2 雌核发育ENU诱变草鱼群体的遗传多样性 | 第30-31页 |
| 2.3.3 雌核发育ENU诱变草鱼纯合性评价 | 第31-32页 |
| 2.4 讨论 | 第32-34页 |
| 第三章 ENU诱变草鱼4个家系肌肉生长抑制素基因（mstn1、mstn2）SNPs筛选及生长性状关联分析 | 第34-43页 |
| 3.1 实验材料 | 第34-35页 |
| 3.1.1 实验样品采集 | 第34页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第34-35页 |
| 3.1.3 实验试剂 | 第35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35-36页 |
| 3.2.1 生长指标测量 | 第35页 |
| 3.2.2 基因组DNA提取及SNPs筛选 | 第35-36页 |
| 3.2.3 数据统计与分析 | 第36页 |
| 3.3 结果 | 第36-41页 |
| 3.3.1 ENU诱变草鱼4个家系生长性状对比 | 第36-39页 |
| 3.3.2 mstn1、mstn2基因序列分析及SNPs位点筛选 | 第39-41页 |
| 3.4 讨论 | 第41-43页 |
| 论文总结 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-51页 |
| 附录：英文缩略语表 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52页 |
