| 致谢 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9-10页 |
| 英文缩略语 | 第12-18页 |
| 引言 | 第18-21页 |
| 第一章 可注射PEG水凝胶前体合成和凝胶制备 | 第21-32页 |
| 1.1 前言 | 第21-22页 |
| 1.2 材料与方法 | 第22-25页 |
| 1.2.1 主要材料与试剂 | 第22页 |
| 1.2.2 主要材料与试剂的精制 | 第22页 |
| 1.2.3 主要检测仪器和设备 | 第22页 |
| 1.2.4 凝胶前体合成及凝胶的制备 | 第22-24页 |
| 1.2.5 凝胶前体及凝胶的表征方法 | 第24-25页 |
| 1.3 结果 | 第25-28页 |
| 1.3.1 凝胶前体的合成~1H NMR谱图 | 第25-26页 |
| 1.3.2 凝胶前体的GPC曲线 | 第26页 |
| 1.3.3 凝胶制备 | 第26-28页 |
| 1.4 讨论 | 第28-30页 |
| 1.5 本章小结 | 第30-32页 |
| 第二章 凝胶的理化性能研究及体外生物学性能评价 | 第32-52页 |
| 2.1 前言 | 第32-33页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第33-42页 |
| 2.2.1 主要材料及仪器 | 第33页 |
| 2.2.2 凝胶力学性能检测 | 第33-34页 |
| 2.2.3 凝胶溶胀实验 | 第34页 |
| 2.2.4 凝胶降解实验 | 第34-35页 |
| 2.2.5 SEM观察 | 第35页 |
| 2.2.6 水凝胶的生物安全性评价 | 第35-37页 |
| 2.2.7 成骨前体细胞在凝胶表面粘附、增殖以及铺展情况的观察 | 第37-39页 |
| 2.2.8 成骨前体细胞在凝胶表面的成骨活性的检测 | 第39-41页 |
| 2.2.9 成骨前体细胞荷载及入侵生长观察 | 第41-42页 |
| 2.2.10 相关定量数据的统计学处理 | 第42页 |
| 2.3 结果 | 第42-48页 |
| 2.3.1 凝胶力学性能 | 第42页 |
| 2.3.2 凝胶的溶胀率 | 第42-43页 |
| 2.3.3 凝胶的降解行为 | 第43页 |
| 2.3.4 水凝胶横断面扫描电镜观察 | 第43-44页 |
| 2.3.5 水凝胶的生物安全性 | 第44-45页 |
| 2.3.6 成骨前体细胞粘附、增殖及铺展情况 | 第45-46页 |
| 2.3.7 接种于凝胶表面的成骨前体细胞成骨活性 | 第46-47页 |
| 2.3.8 成骨前体细胞荷载及入侵生长情况 | 第47-48页 |
| 2.4 讨论 | 第48-51页 |
| 2.5 本章小结 | 第51-52页 |
| 第三章 荷载rhBMP-2和rBMSC凝胶的制备及体外生物学评价 | 第52-77页 |
| 3.1 前言 | 第52-53页 |
| 3.2 材料与方法 | 第53-63页 |
| 3.2.1 主要材料与仪器 | 第53-54页 |
| 3.2.2 大鼠骨髓间充质干细胞(rBMSC)的分离培养和鉴定 | 第54-56页 |
| 3.2.3 rBMSC在凝胶表面黏附、铺展及增殖情况 | 第56页 |
| 3.2.4 接种在凝胶表面的rBMSC凋亡情况检测 | 第56-57页 |
| 3.2.5 rBMSC细胞在凝胶中三维荷载实验 | 第57-58页 |
| 3.2.6 rBMSC在凝胶中侵入生长观察 | 第58页 |
| 3.2.7 大分子蛋白荷载后释放实验 | 第58-59页 |
| 3.2.8 荷载不同浓度rhBMP-2的水凝胶对rBMSC增殖的影响 | 第59-60页 |
| 3.2.9 rBMSC在荷载rhBMP-2的凝胶表面的成骨活性检测 | 第60-61页 |
| 3.2.10 rBMSC在荷载有rhBMP-2的凝胶表面上的细胞周期变化 | 第61-62页 |
| 3.2.11 水凝胶中三维荷载的rBMSC成骨活性检测 | 第62-63页 |
| 3.2.12 相关定量数据的统计学处理 | 第63页 |
| 3.3 结果 | 第63-72页 |
| 3.3.1 原代rBMSC培养过程中的细胞形态变化情况 | 第63-64页 |
| 3.3.2 rBMSC的多向分化能力 | 第64页 |
| 3.3.3 rBMSC流式细胞检测结果分析 | 第64-65页 |
| 3.3.4 rBMSC在凝胶表面的粘附、增殖及铺展表现 | 第65-66页 |
| 3.3.5 rBMSC在凝胶表面的凋亡表现 | 第66-67页 |
| 3.3.6 rBMSC在凝胶中三维荷载以及侵入生长表现 | 第67-68页 |
| 3.3.7 大分子蛋白在凝胶中的荷载与释放 | 第68-69页 |
| 3.3.8 不同浓度rhBMP-2的凝胶对rBMSC的增殖的促进作用 | 第69-70页 |
| 3.3.9 荷载rhBMP-2的凝胶对rBMSC的成骨分化的促进作用 | 第70页 |
| 3.3.10 rBMSC在荷载rhBMP-2的凝胶表面细胞周期流式细胞学检测 | 第70-71页 |
| 3.3.11 水凝胶中三维荷载的rBMSC成骨活性 | 第71-72页 |
| 3.4 讨论 | 第72-75页 |
| 3.5 本章小结 | 第75-77页 |
| 第四章 可注射PEG水凝胶在大鼠颅骨CSD中的应用研究 | 第77-101页 |
| 4.1 前言 | 第77-78页 |
| 4.2 实验动物、主要仪器材料与方法 | 第78-85页 |
| 4.2.1 实验动物 | 第78页 |
| 4.2.2 主要材料与仪器 | 第78页 |
| 4.2.3 SD大鼠临界骨缺损模型建立及凝胶植入实验 | 第78-80页 |
| 4.2.4 Micro-CT测试及成骨骨量分析 | 第80-81页 |
| 4.2.5 组织石蜡包埋切片制作 | 第81-82页 |
| 4.2.6 组织切片的HE染色 | 第82页 |
| 4.2.7 组织切片的Masson染色 | 第82-83页 |
| 4.2.8 组织切片的免疫组化染色(IHC) | 第83-84页 |
| 4.2.9 组织切片观察和数据化处理 | 第84-85页 |
| 4.2.10 相关定量数据的统计学处理 | 第85页 |
| 4.3 结果 | 第85-96页 |
| 4.3.1 手术和术后一般情况 | 第85-86页 |
| 4.3.2 术后4w时大鼠颅骨CSD的修复再生情况 | 第86-89页 |
| 4.3.3 术后8w时大鼠颅骨CSD的修复再生情况 | 第89-93页 |
| 4.3.4 术后12w时大鼠颅骨CSD的修复再生情况 | 第93-96页 |
| 4.4 讨论 | 第96-99页 |
| 4.5 本章小结 | 第99-101页 |
| 全文总结和展望 | 第101-103页 |
| 文献综述 | 第103-115页 |
| 参考文献 | 第115-141页 |
| 博士在读期间主要成果 | 第141-142页 |
