摘要 | 第7-10页 |
ABSTRACT | 第10-12页 |
缩略词表 | 第13-15页 |
第一章 脂肪间充质干细胞的临床应用及治疗糖尿病研究概述(文献综述) | 第15-23页 |
1.1 ADSCs的发现、性质与优势 | 第15-16页 |
1.2 ADSCs的临床应用 | 第16-19页 |
1.2.1 软组织 | 第16-17页 |
1.2.2 骨和软骨 | 第17页 |
1.2.3 伤口愈合 | 第17-18页 |
1.2.4 周围神经再生 | 第18页 |
1.2.5 进入临床应用的障碍 | 第18-19页 |
1.2.6 未来发展方向 | 第19页 |
1.3 基于ADSCs的再生医学治疗糖尿病 | 第19-23页 |
1.3.1 ADSCs直接分化为胰岛素分泌细胞 | 第19-20页 |
1.3.2 胰岛移植 | 第20-21页 |
1.3.3 ADSCs在糖尿病治疗中的机遇和挑战 | 第21-23页 |
第二章 大鼠脂肪间充质干细胞培养、鉴定与成胰岛样β细胞诱导 | 第23-39页 |
前言 | 第23-24页 |
2.1 材料 | 第24-26页 |
2.1.1 主要仪器设备 | 第24-25页 |
2.1.2 实验动物 | 第25页 |
2.1.3 试剂与耗材 | 第25页 |
2.1.4 培养液 | 第25-26页 |
2.2 实验方法 | 第26-31页 |
2.2.1 ADSCs分离培养、传代、冻存及鉴定 | 第26-27页 |
2.2.2 PASCs分离培养、传代、冻存及鉴定 | 第27页 |
2.2.3 ADSCs成胰岛样β细胞诱导及检测 | 第27-31页 |
2.3 结果 | 第31-36页 |
2.3.1 ADSCs形态特征 | 第31页 |
2.3.2 PASCs形态特征 | 第31页 |
2.3.3 ADSCs成胰岛样β细胞诱导后形态特征 | 第31-32页 |
2.3.4 ADSCs表面标记鉴定 | 第32-33页 |
2.3.5 PASCs表面标记鉴定 | 第33-34页 |
2.3.6 ADSCs成胰岛样β细胞诱导后检测 | 第34-36页 |
2.4 讨论 | 第36-39页 |
第三章 大鼠脂肪间充质干细胞成胰岛样β细胞诱导过程的机理探讨 | 第39-51页 |
前言 | 第39-40页 |
3.1 材料 | 第40-41页 |
3.1.1 主要仪器设备 | 第40页 |
3.1.2 试剂与耗材 | 第40-41页 |
3.1.3 反应液 | 第41页 |
3.2 实验方法 | 第41-44页 |
3.2.1 q-PCR分析mRNA水平的变化 | 第41-42页 |
3.2.2 Western Blotting分析蛋白水平的变化 | 第42-43页 |
3.2.3 免疫组化鉴定Insulin的表达 | 第43-44页 |
3.2.4 统计学分析 | 第44页 |
3.3 结果 | 第44-48页 |
3.3.1 Dvl2、Lrp5、Gsk3β、β-catenin、Tcf7l2、insulin、Gcg、Gck、GLUT2、Irs1、Irs2在随时间依赖的成胰岛样β细胞诱导后ADSCs中mRNA的差异表达 | 第44-46页 |
3.3.2 Western Blotting | 第46-47页 |
3.3.3 免疫组化 | 第47-48页 |
3.4 讨论 | 第48-51页 |
第四章 脂肪间充质干细胞治疗大鼠Ⅰ型糖尿病的效果 | 第51-69页 |
前言 | 第51-52页 |
4.1 材料 | 第52-53页 |
4.1.1 主要仪器设备 | 第52页 |
4.1.2 实验动物 | 第52-53页 |
4.1.3 试剂与耗材 | 第53页 |
4.2 实验方法 | 第53-57页 |
4.2.1 构建大鼠Ⅰ型糖尿病模型 | 第53-54页 |
4.2.2 尾静脉细胞移植 | 第54-55页 |
4.2.3 细胞移植后治疗效果检测 | 第55-56页 |
4.2.4 统计学分析 | 第56-57页 |
4.3 结果 | 第57-66页 |
4.3.1 大鼠Ⅰ型糖尿病模型的构建 | 第57-58页 |
4.3.2 尾静脉细胞移植 | 第58-59页 |
4.3.3 细胞移植后治疗效果检测 | 第59-66页 |
4.4 讨论 | 第66-69页 |
结论 | 第69-70页 |
创新点及进一步研究内容 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-83页 |
致谢 | 第83-84页 |
论文发表情况 | 第84页 |