摘要 | 第7-8页 |
ABSTRACT | 第8-9页 |
缩略语的中英文对照 | 第10-11页 |
文献综述 | 第11-27页 |
第一章 雌激素与卵泡发育概述 | 第11-19页 |
1. 雌激素概述 | 第11-14页 |
1.1 雌激素受体 | 第11-13页 |
1.2 雌激素受体配体与雌激素反应元件 | 第13页 |
1.3 雌激素作用途径 | 第13-14页 |
2. 卵泡发育概述 | 第14-16页 |
2.1 原始卵泡库的建立 | 第14-15页 |
2.2 卵泡的募集 | 第15页 |
2.3 卵泡的选择与优势化 | 第15页 |
2.4 卵泡的成熟和排卵 | 第15-16页 |
3. 雌激素对卵泡发育的影响 | 第16-19页 |
第二章 雌激素的合成与代谢 | 第19-23页 |
1. 雌激素的合成 | 第19页 |
2. 雌激素的代谢 | 第19-23页 |
2.1 Cyp1a1/2简述 | 第20-21页 |
2.2 Cyp1b1简述 | 第21-23页 |
第三章 STAT蛋白研究概况 | 第23-27页 |
1. STAT蛋白结构与功能简述 | 第23-24页 |
2. STAT蛋白的转录调控机制 | 第24-26页 |
2.1 STAT蛋白在细胞核与质间的穿梭 | 第24页 |
2.2 STAT蛋白与DNA的绑定 | 第24-25页 |
2.3 STAT蛋白的转录激活 | 第25-26页 |
3. STAT1蛋白简述 | 第26-27页 |
实验研究 | 第27-53页 |
第四章 STAT1过表达载体及Cyp1b1荧光素酶报告载体的构建 | 第27-37页 |
1. 实验材料与仪器 | 第27-28页 |
1.1 试剂及菌株 | 第27页 |
1.2 相关溶液的配制 | 第27-28页 |
1.3 主要仪器 | 第28页 |
2. 实验方法 | 第28-33页 |
2.1 质粒构建设计 | 第28页 |
2.2 PCR产物的胶回收 | 第28-29页 |
2.3 DNA片段连接 | 第29-30页 |
2.4 点突变 | 第30-31页 |
2.5 质粒DNA转化 | 第31页 |
2.6 质粒的菌液PCR鉴定 | 第31-32页 |
2.7 质粒的提取 | 第32-33页 |
2.8 质粒的酶切鉴定 | 第33页 |
2.9 质粒的测序及结果比对分析 | 第33页 |
3. 实验结果与分析 | 第33-36页 |
3.1 STAT1过表达载体及野生型Cyp1b1荧光素酶报告载体的构建与鉴定 | 第33-35页 |
3.2 突变型Cyp1b1荧光素酶报告载体的构建与鉴定 | 第35-36页 |
4. 讨论 | 第36-37页 |
第五章 STAT1调控Cyp1b1表达机制的研究 | 第37-53页 |
1. 材料与仪器 | 第37-39页 |
1.1 主要实验材料与试剂 | 第37-38页 |
1.2 实验动物 | 第38页 |
1.3 主要实验仪器 | 第38-39页 |
2. 实验方法 | 第39-45页 |
2.1 小鼠卵泡颗粒细胞的分离与培养 | 第39页 |
2.2 细胞转染 | 第39-40页 |
2.3 细胞总RNA的提取 | 第40-41页 |
2.4 反转录cDNA的合成 | 第41页 |
2.5 引物设计 | 第41-42页 |
2.6 实时荧光定量PCR (RT-PCR) | 第42页 |
2.7 蛋白质免疫印迹(Western Blot) | 第42-44页 |
2.8 细胞复苏、传代与冻存 | 第44页 |
2.9 NIH 3T3细胞培养 | 第44页 |
2.10 Dual-Luciferase Reporter Assay System检测 | 第44-45页 |
2.11. 数据分析 | 第45页 |
3. 实验结果分析 | 第45-50页 |
3.1 在小鼠颗粒细胞中过表达STAT1能引起Cyp1b1的表达量升高 | 第45-46页 |
3.2 STAT1参与Cyp1b1表达调控的机制 | 第46-49页 |
3.3 BS1与BS 2在Cyp1b1启动子区的重要性比较 | 第49-50页 |
4. 讨论 | 第50-53页 |
参考文献 | 第53-61页 |
全文结论 | 第61-63页 |
附录 | 第63-65页 |
致谢 | 第65-67页 |
硕士期间发表的论文 | 第67页 |