摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一章 文献综述 | 第10-23页 |
1.1 病原特性 | 第11-12页 |
1.1.1 PRV分类地位 | 第11页 |
1.1.2 PRV形态学与理化性质 | 第11-12页 |
1.2 PRV基因组 | 第12页 |
1.3 PRV的增殖 | 第12-13页 |
1.4 PRV的体外培养特性 | 第13页 |
1.5 PRV主要编码蛋白 | 第13-15页 |
1.5.1 gB糖蛋白 | 第14页 |
1.5.2 gE糖蛋白 | 第14-15页 |
1.6 流行病学 | 第15-17页 |
1.6.1 易感动物种群 | 第16-17页 |
1.6.2 传播方式 | 第17页 |
1.6.3 PRV感染特点 | 第17页 |
1.7 PRV的诊断技术 | 第17-18页 |
1.8 PRV的防控 | 第18-23页 |
1.8.1 疫苗种类及优缺点 | 第18-19页 |
1.8.2 国内市场上的商品化疫苗统计 | 第19-21页 |
1.8.3 PRV商品疫苗的生产应用 | 第21-23页 |
第二章 猪伪狂犬疫苗临床免疫应答研究 | 第23-42页 |
2.1 实验材料 | 第23-24页 |
2.1.1 主要试剂和器材设备 | 第23页 |
2.1.2 实验中检测血清来源和背景 | 第23-24页 |
2.2 实验方法 | 第24-27页 |
2.2.1 血液样本的采集和处理 | 第24页 |
2.2.2 美国IDEXX猪伪狂犬gB或gE抗体检测试剂盒检测操作 | 第24-25页 |
2.2.3 A实验组猪只血液样品采集和检测方案 | 第25-26页 |
2.2.4 B实验组猪只血液样品采集和检测方案 | 第26-27页 |
2.2.5 C实验组猪只血液样品采集和检测方案 | 第27页 |
2.2.6 D实验组猪只血液样品检测 | 第27页 |
2.3 血清检测结果 | 第27-39页 |
2.3.1 A组实验猪只血清抗体检测结果 | 第28-29页 |
2.3.2 B组实验猪只血清抗体检测结果 | 第29-34页 |
2.3.3 C组实验猪只血清抗体检测结果 | 第34-39页 |
2.3.4 D组实验猪只血清抗体检测结果 | 第39页 |
2.4 讨论 | 第39-41页 |
2.5 小结 | 第41-42页 |
第三章 gB抗体水平评估方法的初步建立 | 第42-64页 |
3.1 实验材料 | 第42-43页 |
3.1.1 病毒基因组及检测血清 | 第42页 |
3.1.2 主要试剂 | 第42-43页 |
3.1.3 主要仪器和设备 | 第43页 |
3.2 实验方法 | 第43-53页 |
3.2.1 gB基因重组表达质粒的构建与表达 | 第43-49页 |
3.2.2 目的蛋白纯化与蛋白的western-blot实验 | 第49-50页 |
3.2.3 目的蛋白最适包被浓度及最适血清稀释倍数、最适酶标二抗浓度的确定 | 第50-51页 |
3.2.4 gB-M和gB-N蛋白在最适条件下的初步检测 | 第51-52页 |
3.2.5 gB-M蛋白在最适条件下的扩大检测及阴阳性临界值的判定 | 第52页 |
3.2.6 gB-M抗原ELISA方法与IDEXX猪伪狂犬gB试剂盒的对比 | 第52页 |
3.2.7 gB-M抗原ELISA方法与IDEXX-PRV-gB试剂盒检测母猪阳性血清的对比 | 第52-53页 |
3.3 结果与分析 | 第53-62页 |
3.3.1 目的基因片段的扩增、酶切鉴定及测序结果 | 第53-54页 |
3.3.2 目的蛋白的诱导表达及最适表达温度探究结果 | 第54-56页 |
3.3.3 目的蛋白的纯化及蛋白western-blot实验结果 | 第56-58页 |
3.3.4 蛋白最适包被浓度及对应的最适血清稀释倍数、最适二抗浓度的确定结果 | 第58-59页 |
3.3.5 gB-M和gB-N蛋白在最适条件下的初步检测结果 | 第59-60页 |
3.3.6 gB-M蛋白在最适条件下的扩大检测及阴阳性临界值的判定结果 | 第60页 |
3.3.7 gB-M抗原的ELISA方法与IDEXX猪伪狂犬gB试剂盒的对比 | 第60-61页 |
3.3.8 gB-M抗原ELISA方法与IDEXX猪伪狂犬gB试剂盒检测母猪阳性血清方面的对比结果 | 第61-62页 |
3.4 讨论 | 第62-63页 |
3.5 小结 | 第63-64页 |
总结 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-72页 |
致谢 | 第72-73页 |
作者简介 | 第73页 |
攻读硕士学位期间第一作者发表的学术论文 | 第73页 |