| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第11-19页 |
| 1.1 茯苓多糖 | 第11-13页 |
| 1.2 羧甲基化茯苓多糖研究现状 | 第13-15页 |
| 1.3 凝胶色谱-示差-多角度激光光散射联用的应用 | 第15-16页 |
| 1.4 羧甲基茯苓多糖抗氧化研究现状 | 第16-18页 |
| 1.5 选题意义 | 第18-19页 |
| 第二章 碱溶性茯苓多糖的提取工艺 | 第19-30页 |
| 2.1 材料与方法 | 第19-22页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第19-20页 |
| 2.1.2 前期处理 | 第20页 |
| 2.1.3 茯苓多糖的提取条件单因素实验 | 第20-21页 |
| 2.1.4 正交试验 | 第21页 |
| 2.1.5 正交试验验证 | 第21页 |
| 2.1.6 多糖含量的测定 | 第21-22页 |
| 2.1.7 茯苓多糖脱蛋白 | 第22页 |
| 2.1.8 茯苓多糖红外光谱分析 | 第22页 |
| 2.2 结果与分析 | 第22-28页 |
| 2.2.1 葡萄糖标准曲线的绘制 | 第22页 |
| 2.2.2 单因素对茯苓多糖提取的影响 | 第22-26页 |
| 2.2.3 正交试验结果 | 第26-27页 |
| 2.2.4 正交试验验证结果 | 第27-28页 |
| 2.2.5 茯苓多糖红外光谱分析 | 第28页 |
| 2.3 本章小结 | 第28-30页 |
| 2.3.1 讨论 | 第28-29页 |
| 2.3.2 结论 | 第29-30页 |
| 第三章 羧甲基茯苓多糖的制备 | 第30-40页 |
| 3.1 材料与方法 | 第30-33页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第30-31页 |
| 3.1.2 茯苓多糖羧甲基化单因素试验 | 第31-32页 |
| 3.1.3 正交试验 | 第32页 |
| 3.1.4 正交试验验证 | 第32页 |
| 3.1.5 取代度测定 | 第32页 |
| 3.1.6 溶解度测定 | 第32-33页 |
| 3.1.7 羧甲基茯苓多糖红外光谱分析 | 第33页 |
| 3.2 结果与分析 | 第33-38页 |
| 3.2.1 单因素对CMP取代度的影响 | 第33-36页 |
| 3.2.2 茯苓多糖羧甲基化正交试验 | 第36-37页 |
| 3.2.3 正交试验验证结果 | 第37页 |
| 3.2.4 羧甲基茯苓多糖溶解度 | 第37-38页 |
| 3.2.5 羧甲基茯苓多糖红外光谱分析 | 第38页 |
| 3.3 本章小结 | 第38-40页 |
| 3.3.1 讨论 | 第38-39页 |
| 3.3.2 结论 | 第39-40页 |
| 第四章 羧甲基茯苓多糖分子量范围研究 | 第40-56页 |
| 4.1 材料与方法 | 第40-41页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第40页 |
| 4.1.2 羧甲基茯苓多糖的制备 | 第40-41页 |
| 4.1.3 GPC-RI-MALS法检测 | 第41页 |
| 4.2 结果与分析 | 第41-54页 |
| 4.2.1 A组数据分析 | 第41-47页 |
| 4.2.2 B组数据分析 | 第47-50页 |
| 4.2.3 C组数据分析 | 第50-54页 |
| 4.3 本章小结 | 第54-56页 |
| 4.3.1 讨论 | 第54-55页 |
| 4.3.2 结论 | 第55-56页 |
| 第五章 羧甲基茯苓多糖抗氧化研究 | 第56-62页 |
| 5.1 材料与方法 | 第56-58页 |
| 5.1.1 材料与试剂 | 第56-57页 |
| 5.1.2 实验方法 | 第57-58页 |
| 5.2 结果与分析 | 第58-61页 |
| 5.2.1 还原能力测定结果 | 第58-59页 |
| 5.2.2 羟自由基的清除结果 | 第59-60页 |
| 5.2.3 超氧自由基的清除 | 第60-61页 |
| 5.3 本章小结 | 第61-62页 |
| 5.3.1 讨论 | 第61页 |
| 5.3.2 结论 | 第61-62页 |
| 第六章 结论与创新点 | 第62-63页 |
| 6.1 结论 | 第62页 |
| 6.2 创新点 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 作者简介 | 第70页 |