| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 1 前言 | 第10-20页 |
| ·香蕉的概况 | 第10-13页 |
| ·香蕉的生物学特性 | 第10页 |
| ·香蕉的起源 | 第10-11页 |
| ·我国香蕉种质资源的分布 | 第11页 |
| ·香蕉的品种与分类 | 第11-13页 |
| ·分子标记的简介 | 第13-14页 |
| ·RAPD分子标记技术的简介与在香蕉种质资源中的研究应用 | 第14-17页 |
| ·RAPD技术的基本原理 | 第15页 |
| ·RAPD技术的特点 | 第15-16页 |
| ·RAPD标记技术在香蕉中的应用 | 第16-17页 |
| ·SCAR分子标记技术的简介与应用 | 第17-18页 |
| ·SCAR技术的基本原理 | 第17页 |
| ·SCAR技术的特点 | 第17页 |
| ·RAPD-SCAR标记技术在不同物种中的应用 | 第17-18页 |
| ·本研究的选题背景与意义 | 第18-20页 |
| 2 实验材料与方法 | 第20-32页 |
| ·供试品种 | 第20-22页 |
| ·主要的生化试剂 | 第22-23页 |
| ·主要实验仪器及设备 | 第23页 |
| ·主要试剂的配制 | 第23-24页 |
| ·提取基因组DNA相关试剂的配制 | 第23-24页 |
| ·相关培养基的配制 | 第24页 |
| ·实验方法 | 第24-32页 |
| ·基因组DNA的提取(2×CTAB法) | 第24-25页 |
| ·基因组DNA的浓度与纯度测定 | 第25-26页 |
| ·RAPD反应测序的优化 | 第26页 |
| ·RAPD引物的筛选 | 第26-28页 |
| ·RAPD差异性片段的回收 | 第28页 |
| ·差异性片段与T-载体的连接 | 第28-29页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备(氯化钙法) | 第29页 |
| ·重组质粒的转化 | 第29-30页 |
| ·差异性DNA片段的检测与测序 | 第30-31页 |
| ·SCAR引物设计与PCR验证 | 第31-32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-49页 |
| ·40份华蕉材料基因组DNA的提取 | 第32页 |
| ·RAPD反应体系的优化 | 第32-35页 |
| ·引物浓度的优化 | 第32-33页 |
| ·RAPD-PCR反应程序中退火温度的优化 | 第33-34页 |
| ·华蕉中RAPD-PCR最佳反应系统的建立 | 第34-35页 |
| ·华蕉RAPD差异性片段的分析 | 第35-37页 |
| ·RAPD引物的筛选 | 第35页 |
| ·RAPD差异性条带的连接、转化与测序 | 第35-37页 |
| (1) 差异性片段的回收与纯化 | 第35-36页 |
| (2) 差异性片段的克隆 | 第36页 |
| (3) 差异性片段的转化验证 | 第36-37页 |
| ·差异性片段的测序结果 | 第37-41页 |
| ·SCAR标记的建立与分析 | 第41-45页 |
| ·SCAR引物的设计 | 第41页 |
| ·SCAR标记的结果 | 第41-45页 |
| ·华蕉的聚类分析与分类 | 第45页 |
| ·36个华蕉品种和4个华蕉测试种的鉴别 | 第45-49页 |
| 4 讨论 | 第49-53页 |
| ·香蕉基因组DNA的提取 | 第49-50页 |
| ·华蕉RAPD标记的稳定性与重复性 | 第50页 |
| ·华蕉SCAR标记的应用 | 第50-53页 |
| 5 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-57页 |
| 致谢 | 第57页 |