| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-6页 |
| 目录 | 第6-9页 |
| 第一章 绪论 | 第9-15页 |
| ·前言 | 第9-12页 |
| ·酸性脲酶 | 第9页 |
| ·氨基甲酸乙酯 | 第9-10页 |
| ·固定化酶的方法及交联剂 | 第10-11页 |
| ·固定化脲酶的应用 | 第11-12页 |
| ·固定化脲酶的研究现状 | 第12-13页 |
| ·国内研究现状 | 第12页 |
| ·国外研究现状 | 第12-13页 |
| ·立题意义 | 第13-14页 |
| ·本论文研究内容 | 第14-15页 |
| 第二章 材料与方法 | 第15-20页 |
| ·材料 | 第15-16页 |
| ·主要试剂 | 第15页 |
| ·主要仪器 | 第15页 |
| ·菌种来源 | 第15页 |
| ·培养基 | 第15-16页 |
| ·方法 | 第16-20页 |
| ·Providencia sp. JNB815 产酸性脲酶的分离纯化 | 第16页 |
| ·游离酶酶活测定 | 第16页 |
| ·蛋白质含量的测定 | 第16页 |
| ·固定化酶酶活测定 | 第16-17页 |
| ·壳聚糖微球固定化脲酶的制备方法 | 第17页 |
| ·壳聚糖微球固定化酶的条件优化 | 第17页 |
| ·壳聚糖微球固定化酶的性质 | 第17-18页 |
| ·尿素去除率测定方法 | 第18页 |
| ·EC 去除率的测定 | 第18页 |
| ·黄酒中风味物质的测定 | 第18页 |
| ·CLUAs 的制备 | 第18-19页 |
| ·CLUAs 在黄酒中的应用 | 第19-20页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第20-41页 |
| ·Providencia sp. JNB815 产酸性脲酶的分离纯化 | 第20-23页 |
| ·乙醇分级沉淀 | 第20页 |
| ·DEAE 离子交换层析 | 第20-21页 |
| ·Resource Q 离子交换层析 | 第21页 |
| ·Superdex 200 凝胶层析 | 第21-22页 |
| ·SDS-PAGE | 第22页 |
| ·两种酶的纯化结果分析 | 第22-23页 |
| ·壳聚糖微球固定化酸性脲酶的制备条件 | 第23-25页 |
| ·壳聚糖和明胶含量对固定化酸性脲酶活性的影响 | 第23页 |
| ·交联剂浓度和固定化时间对固定化酸性脲酶活性的影响 | 第23-24页 |
| ·加酶量对固定化酸性脲酶活性和回收率的影响 | 第24-25页 |
| ·壳聚糖微球固定化脲酶的特性表征 | 第25-31页 |
| ·最适温度 | 第25页 |
| ·温度稳定性 | 第25-26页 |
| ·最适 pH | 第26页 |
| ·pH 稳定性 | 第26-27页 |
| ·乙醇耐受性 | 第27页 |
| ·金属离子和黄酒中酸成分对酶活的影响 | 第27-28页 |
| ·固定化酶的重复使用性 | 第28页 |
| ·固定化酶的动力学参数 | 第28-29页 |
| ·固定化脲酶的结构分析 | 第29-31页 |
| ·壳聚糖微球固定化脲酶的应用 | 第31-34页 |
| ·固定化脲酶在流化床反应器中的应用及条件优化 | 第31-33页 |
| ·分批式反应器中固定化酶的尿素去除率 | 第33页 |
| ·分批式反应器中固定化酶的 EC 去除率 | 第33-34页 |
| ·固定化酶处理后的黄酒风味分析 | 第34页 |
| ·CLUAs 的制备与性质 | 第34-38页 |
| ·沉淀剂类型的选择 | 第34-35页 |
| ·京尼平浓度和交联时间对 CLUAs 酶活的影响 | 第35页 |
| ·牛血清白蛋白的浓度对 CLUAs 酶活回收率的影响 | 第35-36页 |
| ·CLUAs 的动力学参数 | 第36-37页 |
| ·CLUAs 的扫描电镜结构 | 第37-38页 |
| ·CLUAs 在黄酒中的重复使用性 | 第38页 |
| ·CLUAs 在分批式反应器中的应用 | 第38-40页 |
| ·CLUAs 处理对黄酒的尿素去除率 | 第38-39页 |
| ·CLUAs 处理对黄酒的 EC 去除率 | 第39页 |
| ·CLUAs 处理对黄酒的风味物质的影响 | 第39-40页 |
| ·两种固定化方法的比较 | 第40-41页 |
| 主要结论与展望 | 第41-43页 |
| 主要结论 | 第41页 |
| 展望 | 第41-43页 |
| 致谢 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-49页 |
| 作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第49-50页 |
| 标准曲线 | 第50页 |
