| 缩略词一览表 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-33页 |
| 一 分子病毒学 | 第15-19页 |
| 1 分类学 | 第15页 |
| 2 分子形态学及理化特征 | 第15页 |
| 3 基因组 | 第15-16页 |
| 4 病毒蛋白 | 第16-18页 |
| 5 病毒的复制周期 | 第18-19页 |
| 二 流行病学 | 第19-24页 |
| 1 HEV的分布 | 第19-20页 |
| ·HEV的地理分布 | 第19页 |
| ·HEV的基因型分布 | 第19-20页 |
| 2 动物宿主及种间流行 | 第20-22页 |
| ·猪的HEV流行 | 第21页 |
| ·兔的HEV流行 | 第21-22页 |
| ·其它动物HEV的流行 | 第22页 |
| 3 HEV的传播途径 | 第22-24页 |
| ·粪口途径传播 | 第22-23页 |
| ·血液传播 | 第23页 |
| ·直接接触感染动物传播 | 第23-24页 |
| 三 HEV的临床症状及病理变化 | 第24页 |
| 四 HEV的动物模型 | 第24-25页 |
| 1 非人灵长类动物模型 | 第24-25页 |
| 2 猪动物模型 | 第25页 |
| 3 鼠动物模型 | 第25页 |
| 4 兔动物模型 | 第25页 |
| 五 HEV感染的靶器官 | 第25-26页 |
| 六 肠道黏膜免疫 | 第26-32页 |
| 1 肠道的结构 | 第26-27页 |
| ·肠道组织结构特点 | 第26页 |
| ·肠道绒毛长度 | 第26页 |
| ·肠道隐窝深度 | 第26-27页 |
| ·肠道上皮细胞 | 第27页 |
| 2 肠道的屏障功能 | 第27-31页 |
| ·肠道物理屏障 | 第28-29页 |
| ·肠道的黏膜免疫屏障 | 第29-31页 |
| ·肠薪膜生态屏障 | 第31页 |
| 3 肠道黏膜免疫与病毒 | 第31-32页 |
| 4 HEV及与肠道的关系 | 第32页 |
| 七 本研究的目的与意义 | 第32-33页 |
| 第二章 兔源HEV RNA及抗原在兔全身组织器官的分布与定位 | 第33-57页 |
| 前言 | 第33页 |
| 试验一 兔源HEV灌胃及腹腔攻毒的比较 | 第33-42页 |
| 1. 材料与方法 | 第33-39页 |
| ·材料 | 第33-34页 |
| ·方法 | 第34-39页 |
| 2 结果 | 第39-41页 |
| ·标准品的制备与鉴定 | 第39页 |
| ·标准曲线的制备 | 第39页 |
| ·病毒悬液中的HEV载量的测定 | 第39-40页 |
| ·攻毒后兔粪便中HEV RNA的检测结果 | 第40页 |
| ·攻毒后兔肝脏中HEV RNA的检测结果 | 第40-41页 |
| 3 讨论 | 第41-42页 |
| 试验二 兔源HEV腹腔注射攻毒动物模型的探讨 | 第42-49页 |
| 1. 材料与方法 | 第42-44页 |
| ·材料 | 第42-43页 |
| ·方法 | 第43-44页 |
| 2 结果 | 第44-47页 |
| ·临床观察结果 | 第44-45页 |
| ·攻毒后兔血清及粪便中HEV-RNA的检测结果 | 第45页 |
| ·攻毒后兔血清中抗原及抗体的检测 | 第45页 |
| ·肝脏组织学观察 | 第45-47页 |
| 3 讨论 | 第47-49页 |
| 试验三 兔源HEV RNA及抗原在兔全身组织器官中的分布与定位 | 第49-54页 |
| 1. 材料与方法 | 第49-50页 |
| ·材料 | 第49页 |
| ·方法 | 第49-50页 |
| 2. 结果 | 第50-52页 |
| ·试验兔组织与器官中HEV RNA的检测 | 第50页 |
| ·试验兔组织与器官中ORF2抗原的检测 | 第50-52页 |
| 3. 讨论 | 第52-54页 |
| 试验四 HEV ORF2及ORF3抗原在感染兔肠道中的定位 | 第54-56页 |
| 1. 材料与方法 | 第54页 |
| ·材料 | 第54页 |
| ·方法 | 第54页 |
| 2. 结果 | 第54-55页 |
| ·HEV ORF2抗原在肠道及肠相关淋巴组织的定位 | 第54-55页 |
| ·HEV ORF3抗原在肠道及肠相关淋巴组织的定位 | 第55页 |
| 3. 讨论 | 第55-56页 |
| 小结 | 第56-57页 |
| 第三章 猪源HEV人工感染对沙鼠肠道黏膜免疫的影响 | 第57-73页 |
| 前言 | 第57页 |
| 试验一 沙鼠肠道中HEV RNA及抗原的分布与定位 | 第57-61页 |
| 1 材料与方法 | 第57-59页 |
| ·材料 | 第57-58页 |
| ·方法 | 第58-59页 |
| 2 结果 | 第59页 |
| ·临床观察结果 | 第59页 |
| ·沙鼠粪便中HEV RNA的检测 | 第59页 |
| ·沙鼠肠道中HEV RNA的检测 | 第59页 |
| ·沙鼠肠道中HEV ORF2抗原的分布 | 第59页 |
| 3 讨论 | 第59-61页 |
| 试验二 猪源HEV感染对沙鼠肠道形态及结构的影响 | 第61-67页 |
| 1 材料与方法 | 第61-62页 |
| ·材料 | 第61页 |
| ·方法 | 第61-62页 |
| 2 结果 | 第62-65页 |
| ·HEV感染对沙鼠肠道结构的影响 | 第62页 |
| ·HEV感染对沙鼠各段肠道绒毛长度的影响 | 第62页 |
| ·HEV感染对沙鼠各段肠道隐窝深度的影响 | 第62-63页 |
| ·HEV感染对沙鼠肠道杯状细胞的影响 | 第63-65页 |
| ·HEV感染对沙鼠肠道基底膜的影响 | 第65页 |
| 3 讨论 | 第65-67页 |
| 试验三 猪源HEV感染对沙鼠黏膜免疫相关功能的影响 | 第67-72页 |
| 1 材料与方法 | 第67-68页 |
| ·材料 | 第67页 |
| ·方法 | 第67-68页 |
| 2 结果 | 第68-71页 |
| ·HEV感染对肠道派尔氏结数量的影响 | 第68-69页 |
| ·HEV感染对沙鼠肠道上皮内淋巴细胞数量的影响 | 第69-70页 |
| ·HEV感染对沙鼠肠道SIgA的影响 | 第70页 |
| ·HEV感染对沙鼠肠道肥大细胞数量的影响 | 第70页 |
| ·HEV感染对沙鼠肠绒毛树突状细胞的影响 | 第70-71页 |
| 3 讨论 | 第71-72页 |
| 小结 | 第72-73页 |
| 第四章 兔戊型肝炎病毒(HEV)活体肠袢结扎感染试验 | 第73-82页 |
| 前言 | 第73页 |
| 试验一 兔活体肠袢结扎HEV感染试验 | 第73-79页 |
| 1. 材料与方法 | 第73-76页 |
| ·材料 | 第73-74页 |
| ·兔活体肠袢结扎及攻毒试验 | 第74页 |
| ·样品收集 | 第74-75页 |
| ·ELISA检测血清中抗原 | 第75页 |
| ·免疫组织化学检测组织中ORF2抗原 | 第75页 |
| ·活体结扎兔圆小囊淋巴细胞增殖活性测定 | 第75-76页 |
| 2 结果 | 第76-77页 |
| ·活体结扎肠系膜静脉血清抗原检测 | 第76页 |
| ·活体结扎回肠组织HEV ORF2免疫组织化学染色结果 | 第76页 |
| ·活体结扎圆小囊组织HEV ORF2免疫组织化学染色结果 | 第76-77页 |
| ·HEV对活体结扎兔圆小囊内T淋巴细胞增殖的影响 | 第77页 |
| 3 讨论 | 第77-79页 |
| 试验二 IgA与HEV相互作用初探 | 第79-81页 |
| 1. 材料与方法 | 第79-80页 |
| ·材料 | 第79页 |
| ·攻毒 | 第79页 |
| ·样品收集 | 第79-80页 |
| ·免疫组织化学检测回肠及圆小囊中ORF2抗原 | 第80页 |
| 2 结果 | 第80页 |
| ·回肠HEV ORF2免疫组织化学染色 | 第80页 |
| ·圆小囊HEV ORF2免疫组织化学染色 | 第80页 |
| 3 讨论 | 第80-81页 |
| 小结 | 第81-82页 |
| 结论 | 第82-83页 |
| 本研究的创新点 | 第83-85页 |
| 参考文献 | 第85-99页 |
| 图版与说明 | 第99-105页 |
| 致谢 | 第105-107页 |
| 作者简历 | 第107页 |
