摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-15页 |
第一章 引言 | 第15-31页 |
第一节 生物发光活体成像系统的原理及应用 | 第15-19页 |
第二节 自杀基因在肿瘤治疗中的应用 | 第19-20页 |
第三节 阳离子脂质体介导的基因转移 | 第20-21页 |
第四节 乳腺癌的治疗现状 | 第21-24页 |
第五节 研究的目的和意义 | 第24-26页 |
第六节 研究方法 | 第26-29页 |
第七节 论文结构安排 | 第29-31页 |
第二章 阳离子脂质体促进HSV-ttk质粒在小鼠后肢肌肉内的转染与表达 | 第31-37页 |
第一节 实验材料 | 第31-33页 |
·药品与试剂 | 第31-32页 |
·仪器设备 | 第32页 |
·菌株和质粒 | 第32页 |
·实验动物 | 第32-33页 |
第二节 实验方法和步骤 | 第33-34页 |
·阳离子脂质体-TF 质粒混合物的制备 | 第33页 |
·小鼠后肢肌肉内注射 TF 质粒 | 第33页 |
·活体成像检测 Renila 信号,观察 TF 质粒在肌肉组织内的表达 | 第33-34页 |
第三节 结果 | 第34-36页 |
第四节 小结 | 第36-37页 |
第三章 转染 Fluc-eGFP 报告基因的 4T1 细胞株的建立 | 第37-54页 |
第一节 实验材料 | 第37-41页 |
·药品与试剂 | 第37页 |
·仪器设备 | 第37-38页 |
·溶液及配制 | 第38-40页 |
·细胞,菌株和质粒 | 第40-41页 |
第二节 实验方法和步骤 | 第41-48页 |
·慢病毒的包装 | 第41-44页 |
·小鼠乳腺癌细胞系 4T1 细胞转染 Fluc-eGFP 基因 | 第44-46页 |
·构建的 4T1 细胞系中 Fluc-eGFP 融合蛋白的表达分析 | 第46-48页 |
第三节 结果 | 第48-52页 |
·293T 细胞和 4T1 细胞的培养 | 第48-49页 |
·慢病毒的制备 | 第49-50页 |
·4T1 细胞的慢病毒感染 | 第50页 |
·阳性细胞的筛选 | 第50页 |
·构建的 DF-4T1 细胞的 GFP 和 Fluc 表达分析 | 第50-52页 |
第四节 小结 | 第52-54页 |
第四章 小鼠乳腺癌肿瘤模型的建立 | 第54-59页 |
第一节 实验材料 | 第54-55页 |
·药品与试剂 | 第54页 |
·实验设备 | 第54页 |
·实验动物 | 第54-55页 |
·溶液与配制 | 第55页 |
第二节 实验方法与步骤 | 第55-57页 |
·4T1-DF 细胞的培养和细胞计数 | 第55页 |
·小鼠皮下注射成瘤 | 第55-56页 |
·活体成像监测移植肿瘤细胞的生长 | 第56-57页 |
第三节 结果 | 第57页 |
·小鼠皮下 4T1-DF 乳腺癌细胞移植 | 第57页 |
·移植瘤 Fluc 的表达 | 第57页 |
第四节 小结 | 第57-59页 |
第五章 脂质体介导的HSV-ttk自杀基因治疗对小鼠移植瘤的杀伤作用 | 第59-94页 |
第一节 实验材料 | 第59-64页 |
·仪器设备 | 第59-60页 |
·药品和试剂 | 第60-61页 |
·溶液及配制 | 第61-63页 |
·质粒 | 第63-64页 |
第二节 实验方法和步骤 | 第64-73页 |
·脂质体的制备 | 第64-67页 |
·脂质体介导的自杀基因治疗 | 第67-68页 |
·小鼠活体成像 | 第68-69页 |
·肿瘤组织的分离和切片分析 | 第69-73页 |
第三节 结果 | 第73-92页 |
·Fluc 信号揭示肿瘤的生长和衰退 | 第73-74页 |
·Rluc 信号检测脂质体介导的体内基因转染效率 | 第74-78页 |
·脂质体介导的 HSV-ttk 基因治疗效果 | 第78-82页 |
·免疫荧光 | 第82-83页 |
·TUNEL 凋亡检测 | 第83-88页 |
·肿瘤内新生血管分析 | 第88-92页 |
第四节 讨论 | 第92-93页 |
第五节 小结 | 第93-94页 |
第六章 结论 | 第94-95页 |
参考文献 | 第95-99页 |
致谢 | 第99-100页 |
综述 | 第100-107页 |
References | 第105-107页 |
个人简历,在学期间发表的学术论文 | 第107-108页 |