| 缩略词表 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 第一部分 理论依据 | 第16-45页 |
| 1. 血管性痴呆的概述 | 第16-24页 |
| ·中医对痴呆的认识 | 第16-17页 |
| ·历代医家对痴呆病机的认识 | 第17-18页 |
| ·中医药对血管性痴呆的研究现状 | 第18-24页 |
| 2. 五脏温阳化瘀汤治疗动脉粥样硬化血管性痴呆的理论依据 | 第24-30页 |
| ·中医理论病机 | 第24-26页 |
| ·五脏与血管性痴呆的关系 | 第26-30页 |
| 3. 五脏温阳化瘀汤药物成分现在药理研究 | 第30-32页 |
| 4. “阳化气,阴成形”的理论阐述依据 | 第32-41页 |
| ·理论阐述 | 第32-34页 |
| ·“阳化气,阴成形”以“阳化气”为主 | 第34-41页 |
| 参考文献 | 第41-45页 |
| 第二部分 实验研究 | 第45-105页 |
| 实验一 动脉粥样硬化血管性痴呆动物模型的制作 | 第45-62页 |
| 1. 材料与方法 | 第45-49页 |
| ·实验大鼠 | 第45页 |
| ·主要试剂及仪器 | 第45页 |
| ·方法 | 第45-47页 |
| ·指标检测 | 第47-48页 |
| ·海马组织病理切片 | 第48页 |
| ·统计学处理 | 第48-49页 |
| 2. 结果 | 第49-50页 |
| ·Morris水迷宫结果 | 第49-50页 |
| ·HE结果 | 第50页 |
| 3 讨论 | 第50-59页 |
| ·血管性痴呆 | 第51-53页 |
| ·动脉粥样硬化在血管性痴呆中的作用 | 第53-56页 |
| ·制作VD模型的方法主要有以下几种 | 第56-59页 |
| 参考文献 | 第59-62页 |
| 实验二 五脏温阳化瘀汤对动脉粥样硬化血管性痴呆大鼠海马组织Nrf2-ARE蛋白通路的影响 | 第62-105页 |
| 1. 材料与方法 | 第62-86页 |
| ·实验动物 | 第62页 |
| ·主要试剂 | 第62-63页 |
| ·主要仪器及耗材 | 第63-64页 |
| ·动物模型的制备(同实验一) | 第64页 |
| ·动物分组、药物制备给药方法 | 第64-65页 |
| ·MorriS水迷宫实验测试(同实验一) | 第65页 |
| ·大鼠海马组织取材、样品制备及脑组织蛋白含量测定 | 第65-66页 |
| ·海马组织丙二醛(MDA)含量的测定 | 第66-68页 |
| ·海马组织超氧化物歧化酶(SOD)活力测定 | 第68-70页 |
| ·海马组织总抗氧化能力(TAC)测定 | 第70-72页 |
| ·海马组织谷胱甘肽过氧化酶(GSH-PX)测试 | 第72-74页 |
| ·海马组织脂质过氧化物(LPO)测试 | 第74-75页 |
| ·Western blotting法定量检测大鼠脑组织中Nrf2、HO-1蛋白表达水平 | 第75-81页 |
| ·凝胶电泳迁移率分析(EMSA)检测Nrf2与ARE结合力 | 第81-83页 |
| ·Real-Time PCR法检测HO-1蛋白mRNA的表达 | 第83-86页 |
| ·各组所得计量数据 | 第86页 |
| 2. 结果 | 第86-98页 |
| ·定位航行实验潜伏期结果 | 第86-87页 |
| ·空间搜索实验结果 | 第87-88页 |
| ·血脂检测结果 | 第88-89页 |
| ·大鼠海马MDA含量检测结果 | 第89-90页 |
| ·大鼠海马SOD含量检测结果 | 第90-91页 |
| ·大鼠海马区T-AOC的含量 | 第91-92页 |
| ·大鼠海马区GSH-PX含量 | 第92-93页 |
| ·大鼠海马区LPO的含量 | 第93页 |
| ·大鼠海马细胞核内Nrf2蛋白的表达 | 第93-94页 |
| ·大鼠海马细胞桨内Nrf2的表达 | 第94-95页 |
| ·大鼠海马区HO-1蛋白的表达 | 第95-96页 |
| ·实验组EMSA结果 | 第96-97页 |
| ·大鼠HO-1mRNA的表达 | 第97-98页 |
| 3. 讨论 | 第98-105页 |
| ·Nrf2分子结构 | 第99页 |
| ·Keap1分子结构 | 第99-100页 |
| ·Nrf2/ARE转导通路的调控机制 | 第100-101页 |
| ·在中枢神经系统疾病中的神经保护作用 | 第101-105页 |
| 结论 | 第105-106页 |
| 创新性成果 | 第106-107页 |
| 感谢 | 第107-108页 |
| 参考文献 | 第108-112页 |
